微生物菌剂中5种芽孢杆菌实时荧光PCR鉴定
246中国卫生检验杂志2010年2月第20卷第2期 Chinese Journal of Health Laborat ory Technol ogy, Feb 2010; Vol 20 No 2
【论著】
微生物菌剂中5种芽孢杆菌实时荧光PCR 鉴定
程琳琳, 王芳
1
23
, 吴琼, 金莉莉, 王秋雨
1113
(11辽宁大学生命科学院, 沈阳 110036; 21沈阳出入境检验检疫局, 沈阳 110016)
[摘要] 目的:建立一种快速、准确鉴定环保微生物菌剂中常用5种芽孢杆菌的方法。方法:根据r poB 和gyr B 基因序列
分别设计扩增5种菌的特异性引物及Taq man 探针, 并进行反应条件优化。结果:5种芽孢杆菌均产生特异扩增信号, 最
低检出浓度为:枯草芽孢杆菌24cfu /ml 、地衣芽孢杆菌35cfu /ml 、巨大芽孢杆菌50cfu /ml 、短小芽孢杆菌41cfu /ml 、环状芽孢杆菌21cfu /ml 。结论:研究建立的实时荧光PCR 鉴定方法具有良好的重复性和准确性, 可用于微生物菌剂中5种常用芽孢杆菌的快速鉴定, 具有很好的推广应用前景。[关键词] 微生物菌剂; 芽孢杆菌; 实时荧光PCR; 鉴定
[中图分类号] R44615 [文献标识码] A [文章编号] 1004-8685(2010) -04
I den ti f i ca ti on of f i ve B ac illus species used i n env i i a ith rea l -ti m e PCR
CHEN G L in 2lin , WAN G Fang
1
23
, Q , J I N L i 2li iu 2yu
113
(11L ife School of L iaoning 21Shenyang Entry -Exit I ns pecti on And Quarantine Bureau, Shenyang 110016, )
[Abstract] O T o establish a rap id and accurate method t o identify the five B acillus species generally used in envir on ment m icr obe agentia 1M ethods:By analyzing nucleotide sequences of r po B and gyr B genes, the s pecies -s pecific p ri m ers and p r obes were designed and the reacti on conditi ons were op ti m ized in this research 1Results:The result sho wed that all five s pecies generated a s pecific a mp lificati on signal 1The detecti on li m it of B 1subtilis , B 1lichenifor m is , B 1m egaterium , B 1pum ilus and B 1circulans was 24, 35, 50, 41and 21cfu /ml, res pectively 1Conclusi on:The s pecific real -ti m e PCR method established in this study has g ood re 2peatability and accuracy, and has very g ood p r os pects f or the app licati on in rap id identificati on of these B acillus species 1[Key words] M icr obe agentia; B acillus ; Real ti m e PCR; I dentificati on
芽孢杆菌属中枯草芽孢杆菌(B acillus subtilis ) 、地衣芽孢杆菌(B acillus lichenifor m is ) 、巨大芽孢杆菌(B acillus m egateri 2um ) 、短小芽孢杆菌(B acillus pum ilus ) 、环状芽孢杆菌(B acillus circulans ) 由于能产生多种酶、细菌素、肽类抗生素等物质, 其细胞壁的肽聚糖以及糖被又是重金属的主要螯合位, 能够吸附金属阳离子, 已作为微生物菌剂广泛应用于污水处理、植物病害防治和饲料添加剂中。
中国每年有大量上述菌剂进口, 准确鉴别各种菌剂的成分是产品检测和质量判定的依据。传统的生理生化方法不仅耗时费力, 且容易出现差错, 因此不能满足大量进境微生物菌剂的检测需要。曹凤明等采用多重PCR 鉴定枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌、短小芽孢杆菌, 但短小芽孢杆菌引物与巨大芽孢杆菌和环状芽孢杆菌有交叉反应[1], 本实验室用PCR 法鉴
[基金项目] 沈阳市科技局2006年沈阳大型科学仪器设备共享
定这5种芽孢杆菌, 虽然引物特异性高, 但检测的灵敏性不理
想, 且只能进行定性检测(未发表) 。
1992年H iguchi 提出了实时PCR 的设想, 1996年美国Ap 2p lied B i osyste m s 公司研究出实时荧光定量PCR 技术。该技术不仅实现了PCR 从定性到定量的飞跃, 而且不需要PCR 后处理, 避免了交叉污染, 整个PCR 过程实现了自动化, 且具有耗时短、特异性高、灵敏性强、易于标准化和推广应用等特点。实时荧光定量PCR 技术已在医学、检验检疫、军事、农业、科研
[2]
等领域得到了广泛应用。国外学者已将该技术应用于芽孢杆菌的检测和监控, 如对地毯、土壤、奶粉、明胶等不同环境中的芽孢杆菌进行定量检测。而在国内, 仅见到应用该技术检测蜡样芽孢杆菌的报道[3]。本文以r poB (DNA 依赖的RNA 聚合酶β亚单位) 、gyr B (DNA 促旋酶B 亚单位) 基因序列分别设计得到了特异性引物与Taq man 探针, 建立了使用实时荧光PCR 技术定性定量鉴定5种芽孢杆菌的方法。
1 材料与方法111 材料
11111 菌株 表1为菌株的编号及来源; 所有菌株均采用营
服务专项基金(F136-2)
[作者简介] 程琳琳(1983-) , 女, 硕士研究生, 主要从事微生物
学研究。
3通讯联系人, E -mail:qiuyuwang@lnu 1edu 1cn, wangfang@ln 2
ciq 1gov 1cn
养琼脂平板划线分离与纯化。
中国卫生检验杂志2010年2月第20卷第2期 Chinese Journal of Health Laborat ory Technol ogy, Feb 2010; Vol 20 No 2
T M
11112 主要试剂和仪器 Pre m ix Ex Taq (2×) (Code DRR039A ) 购自宝生物工程(大连) 有限公司, 细菌基因组
247
表2 引物与探针序列
Bacteria B 1subtilis
) Pri m er and probe sequences (5′→3′F2480:GCGG AATCATCCGT ATTGGGGCAG A R2616:AACCTCGCGGGCTTTCTCGCCAA Pb2553:AACTG AACTG ACTGCCG AAG AACGCCT
Gene
DNA 提取试剂盒(离心柱型, 目录号:DP302) 购自天根生化科
技(北京) 有限公司, 荧光PCR 八联管及管盖购自美国伯乐公
司, 细菌微量系列化鉴定管购自北京陆桥技术有限责任公司。荧光PCR 仪(美国MJ 公司, OPTI C ON ) 。
B 1lichenifor m is
rpoB
F460:AAAGCTG ATTTG AAAGTCATTGG AG AT R577:G AGTGGCG AGCGT ATCAT AGTC Pb496:ACGGG AACG ACCACACACTTCAAGCCT
gyr B
表1 实验用菌株
Strains
B acillus subtilis
Strain No 1and source a
ACCC10243、SYCI Q Z0610009、SYCI Q Z0703152、SYCI Q -Z0707199、SYC I Q Z0707203
ACCC10236、SYCI Q Z0608179-1-2、SYC I Q Z0703148、SYC I Q Z0707197、SYC I Q Z0707200
ACCC10245、SYC I Q Z0703151、SYCI Q Z0706068、SY 2C I Q Z0706071、SYC I Q Z0707069-1
ACCC10239、SYC I Q Z0609070、SYCI Q Z0610006、SY 2C I Q Z0703150、SYC I Q Z0707198
ACCC10228、SYCI Q Z0703154、SYCI Q Z0707205ACCC10225ACCC10227ACCC10226I Q SYC I Q 44106-2、LNC I Q O157:H7ATCC17802、C MCC86-87SYC I Q 54001SYC I Q 07011202
B 1circulans B 1pum ilus B 1m egaterium
F486:TGCT AG AGCTTCATTT AGGT ATGGC R625:T AG AACTGTTTT AGCATCACG AG AC Pb519:AGCTTGGCATTCACGTTGCGTCTCCAG F3202:GGCGGT AAAGCACAGTTTGG R3282:TGTGT Pb3229:ATGGGCA F986:R1151:ATT AG ATCGTCATTTCCAAGC
gyr B rpoB rpoB
B acillus lichenifor m is
B acillus m egaterium
B acillus pum ilus B acillus circulans B acillus am yloliquefaciens B acillus chitinolyticus B acillus azotofor m ans B acillus cereus B acillus sphaericus Sal m onella choleraesuis Escherichia coli V ibrio parahae m olyticus L isteria m onocytogenes S taphylococcus aureus
注:a:ACCC:Agricultural Culture Collection of China; SYC I Q :Shenyang Entry -Exit
Inspection And Quarantine Bureau; LNC I Q :Liaoning Entry -Exit Inspection And Quarantine Bureau; ATCC:American Type Culture Collection; C MCC:National Center For Medical Culture Collections
015μl, 3μmol/L荧光探针溶液1μl, DNA 模板约
50ng 左右, 加无菌超纯水补足至25μl 。枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌、短小芽孢杆菌、环状芽孢杆菌荧光PCR 反应条件:第一个循环为50℃2m in; 95℃10m in; 后39个循环为95℃15s; 58℃30s; p late read 。巨大芽孢杆菌的荧光PCR 反应条件:第一个循环为50℃2m in; 95℃10m in; 后39个循环为95℃15s; 70℃30s; p late read 。11214 结果判定 (1) 循环阈值(cycle threshold, Ct 值) ≤35, 表明PCR 过程中有目标DNA 的扩增, 并且阴性对照、阳性对照和空白对照结果正常, 可直接判定为阳性; (2) 待检样基因检测Ct 值在36~40之间, 应重做实时荧光PCR 扩增; 再次扩增后的外源基因Ct 值仍>36, 且曲线有明显的对数增长期, 并且阴性对照、阳性对照和空白对照结果正常, 则可判定为阳性; (3) 再次扩增后外源基因Ct 值>40, 且阴性对照、阳性对照和空白对照结果正常, 可判定为阴性。
11215 实时荧光PCR 的特异性实验 分别以各引物对和探
112 方法
11211 菌株基因组DNA 的制备 挑取平板上单个菌落, 接种
于营养肉汤, 160r/min 振荡培养过夜, 地衣芽孢杆菌30℃培
养, 其它菌株37℃培养, 按细菌基因组DNA 提取试剂盒操作说明提取各菌株的基因组DNA, -20℃冻存备用。11212 引物和探针的设计 使用软件p ri m er510设计引物和探针, 将每条引物和探针在互联网上(htt p://www 1ncbi 1nl m 1cih 1gov/BLAST) 进行比对, 保证其在种内通用、种间特异。表2为各引物和探针序列, 引物和探针由上海英骏生物技术有限公司合成, 其中探针的5′端标记F AM , 3′端标记T AMRA 。11213 荧光PCR 反应体系及程序 以菌株的基因组DNA 为模板, 利用设计好的种特异性引物与探针进行PCR 扩增。反
) 1215μl, 20μmol/L应总体系为25μl, 包括Pre mix Ex Taq T M (2×
针在各自的反应条件下扩增全部35株参考菌株并设空白对
照。
11216 实时荧光PCR 灵敏性实验 将标准菌株B 1subtilis 10243, B 1lichenifor m is 10236, B 1m egaterium 10245, B 1pum ilus
n
10239, B 1circulans 10228的菌液作10倍比稀释后, 各取1m l 提取基因组DNA, 进行荧光PCR 检测, 同时取适当稀释度的菌液进行平板计数。同时以Ct 值为横坐标, 菌液浓度的对数值为纵坐标制作标准曲线, 以得到线性回归方程, Ct 值与细胞量是对应的, 对于未知量样品可以通过标准曲线来定量检测。11217 实时荧光PCR 技术对送检菌剂的检测 采用实时荧光PCR 方法与常规生化方法[4, 5]同时对送检菌剂Z0802033、Z0802034、Z0802035、Z0802036、Z0802037、Z0803155、Z0803156进行检测, 考察其在菌剂检测应用中的可行性。
2482 结果
中国卫生检验杂志2010年2月第20卷第2期 Chinese Journal of Health Laborat ory Technol ogy, Feb 2010; Vol 20 No 2
211 实时荧光PCR 特异性实验结果
图1显示了实时荧光PCR 特异性实验结果, 5种芽孢杆菌在特异的引物和探针下均得到了扩增, 而所有其它对照芽孢杆菌及非芽孢杆菌均没有检测到荧光信号, 说明所设计的引物和探针具有很好的特异性
。
A:B 1subtilis 10243; B:B 1lichenifor m is 10236;
C:B 1m egaterium 10245; D:B 1pum ilus 10239; E:B 1circulans 10228
图3 荧光PCR 定量标准曲线
213 送检菌剂的检测鉴定结果
A:B 1subtilis 10243、Z0610009、Z0703152、Z0707199、Z0707203; B:B 1lichenifor m is 10236、Z0608179-1-2、Z0703148、Z0707197、Z0707200; C:B 1m egaterium 10245、Z0703151、Z0706068、Z0707069-1; D:B 1pum ilus 10239、Z0609070、Z0703150、Z0707198; E:B 1circulans 经过菌落形态、菌体特征及生化实验等表型特征的测定,
送检菌剂Z0802035、Z0802037为枯芽孢杆菌; Z0802034、Z0803155为地衣芽孢杆菌; 菌剂为巨大芽孢杆菌; Z0802033、PCR 的, 图1 荧光PCR 212 实时荧光图2, 枯草芽孢杆菌检
出的最低浓度为24/m地衣芽孢杆菌检出的最低浓度为35cfu /ml, 巨大芽孢杆菌检出的最低浓度为50cfu /ml, 短小芽孢杆菌检出的最低浓度为41cfu /ml, 环状芽孢杆菌检出的最低浓度为21cfu /ml 。标准曲线见图3
。
A:concentrati on of B 1subtilis 10243(left t o right, cfu /ml ) 21355×107, 21355×106, 21355×105, 21355×104, 21355×103, 21355×102, 21355×101; B:concentrati on of B 1lichenifor m is 10236(left t o right, cfu /ml) 31485×107, 31485×106, 31485×105, 31485×104, 31485×103, 31485×102, 31485×101; C:concentrati on of B 1m egateriu m 10245(left t o right, cfu /ml ) 41950×106, 41950×105, 41950×104, 41950×103, 41950×102, 41950×101; D:concentrati on of B 1pum ilus 10239(left t o right, cfu /ml ) 41060×106, 41060×105, 41060×104, 41060×103, 41060×102, 41060×101; E:concentrati on of
B 1circulans 10228(left t o right, cfu /ml ) 21120×106, 21120×105,
21120×104, 21120×103, 21120×102, 21120×101
图2 荧光PCR
灵敏性实验结果
素有“细菌化石”之称的16S r DNA 基因几乎可以对所有
的细菌进行属水平上的鉴定, 是细菌分类学的“分子钟”。由于枯草芽孢杆菌近缘种16S r DNA 序列的相似性在9811%~9918%之间, 并且芽孢杆菌16S r DNA 基因为多拷贝基因, 不同拷贝具有异质性, 根据其序列难以区分这些近缘种[6]。细菌DNA 促旋酶(gyrase ) 由两个亚单位组成:Gyr B 和Gyr A 。该酶的活性结构是由2个A 亚基和2个B 亚基组成的四聚体, 即(BA ) 2, 其中B 亚基由基因gyr B 编码, 分子量约90k Da 或者70k Da 。gyr B 基因是单拷贝的看家基因, 序列长度约112~114kb, 平均碱基替换率为每100万年变化017%~018%, 比
[7]
16S r DNA 的每5000万年变化1%的速率要快, 枯草芽孢杆菌近缘种gyr B 基因的相似性在7514%~9510%之间, 理论上可作为区分芽孢杆菌的靶基因。本文利用gyr B 基因设计5种芽孢杆菌的特异性引物, 仅地衣芽孢杆菌与环状芽孢杆菌较理想, 枯草芽孢杆菌与短小芽孢杆菌的扩增结果不理想, 而目前Gen Bank 中没有巨大芽孢杆菌gyr B 基因序列。r poB (DNA 依赖的RNA 聚合酶β亚单位) 基因也常用于特异性细菌的分子分类研究[8], 经过筛选与分析, 本文利用r poB 基因设计了枯草芽孢杆菌、巨大芽孢杆菌与短小芽孢杆菌的种特异性引物。
本文以r poB 、gyr B 基因序列分别设计5种菌的特异性引物与Taq man 探针, 与对应菌均可产生特异扩增信号, 其它对照的芽孢杆菌及非芽孢杆菌无信号反应, 具有很高的特异性。对送检样品进行的实时荧光PCR 鉴定结果与常规理化方法一致, 表明本文建立的实时荧光PCR 方法具有很好的准确性和实用性。最低检出浓度显示该方法的灵敏性良好。根据定量标准曲线, 相关系数R 值越接近1100, 曲线越可信[9], 本实验所得R 2均大于01979, 可以认为相关性良好。
本文所建立的实时荧光定量PCR 鉴定方法与传统理化方法及PCR 方法相比, 操作简单、特异性好、灵敏性高、报告周期短, 同时可以进行定量分析。此方法适用于枯草芽孢杆菌、地衣芽孢杆菌、巨大芽孢杆菌、短小芽孢杆菌、环状芽孢杆菌的快
(下转第296页)
296中国卫生检验杂志2010年2月第20卷第2期 Chinese Journal of Health Laborat ory Technol ogy, Feb 2010; Vol 20 No 2
-同。经实验, 以30mmol/LK OH 为淋洗液, 与常见F -、Cl 、
-2---NO 3、S O 4、NO 2、B r 等阴离子有较好的分离。流速对分离度影响不大, 一般情况下流速与淋洗出峰时间成正比, 流速增大, 保留时间明显缩短, 但系统压力会升高, 流速的增加受分离柱最大操作压力的限制; 另一方面, 流速减小, 保留时间会增大, 而且峰形会变宽。综合考虑系统压力和保留时间的影响, 选用112m l/min 流速
。
在生活饮用水空白样品中添加不同含量的3个水平2, 4-滴和灭草松混合标准溶液, 每个添加浓度平行测定6次, 测定精密度, 结果见表1。加标回收率为9514%~10411%, 所测定的RSD 在1108%~2104%之间。
表1 水样的加标回收率及相对标准偏差试验(n =6) 水样
2, 4-滴
本底
(mg/L) ND
添加浓度
(μg/L)
30100500
回收率
(%) [***********]991416
相对标准偏差
RSD (%)
[***********]251146
苯达松ND 1005001000
3 小结
、4-。采用离子色谱、灵敏度、精密度和准确度均(G B 5749-2006) 。
[参考文献]
[1]G B /T575019-20061生活饮用水标准检验方法[S]1
[2]陈峰, 蔡少杰, 李庆云, 等1高效液相色谱法测定水中酸性除草剂
灭草松和2, 4-滴[J ]1分析试验室, 2008, 27(1) :286-2881
[3]古珑, 许泓, 林安清, 等1液相色谱-质谱-质谱法检测阫布中残
212 标准曲线与检出限
留2, 4-滴和2, 4-滴丙酸[J ]1现代仪器, 2004, 5:52-551
[4]新增饮用水水质标准检测技术研究检测方法汇编1国家城市供水
将2, 4-滴和灭草松混合标准溶液取500μl 注入I C, 以除草剂峰面积为纵坐标, 以浓度为横坐标, 二种除草剂分别在30~1000μg/L和100~1000μg/L的线性范围内呈良好的线性关系, 二种除草剂的线性相关系数在019991~019998之间。2, 4-滴的检出限为01010mg/L,定量限为0103mg/L,灭草松的检出限为010300mg/L,定量限为0110mg/L, 可以满足生活饮用水水质检测需求。213 方法的精密度和准确度试验
水质检测网上海检测站, 2005, 5:141
[5]郑和辉, 李洁, 魏建荣, 等1液相色谱串联质谱法直接进样测定水
中呋喃丹、草甘膦、灭草松和2, 4-滴[J ]1卫生研究, 2009, 38
(3) :302-3031
[6]吴杰, 方黎, 苏宇亮1离子色谱法同时检测饮用水中的2, 4-滴
和草甘膦[J ]1给水排水, 2008, 34(2) :30-311
(收稿日期:2009-09-27)
(上接第248页)
速鉴定, 能满足检疫部门快速、准确检验相关菌剂的需求, 具有很好的推广应用前景。
[参考文献]
[1]曹凤明, 沈德龙, 李俊, 等1应用多重PCR 鉴定微生物肥料常用芽
[5]Buchanan RE, Gibbons NE 1伯杰细菌鉴定手册[M]1第8版1北
京:科学出版社, 19841
[6]W ang L, Lee F, Tai C, et al 1Comparis on of gyr B gene sequences,
16S r RNA gene sequences and DNA -DNA hybridizati on in the B acil 2
lus subtilis gr oup [J ]1I nt J Syst EvolM icr, 2007, 57:1846-18501
孢杆菌[J ]1微生物学报, 2008, 48(5) :651-6561
[2]Es pyMJ, Uhl JR, Sl oan LM , et al 1Real -ti m e PCR in clinical m icr o 2
bi ol ogy:app licati ons f or r outine laborat ory testing[J ]1Clin M icr obi ol, 2006, 19:165-2561
[3]沈圣, 余娟, 滕毅, 等1Taq Man T M 实时荧光PCR 快速检测蜡样芽胞
[7]侯晓丽, 陈智1分类及鉴别细菌的新靶标-gyr B 基因[J ]1国外医
学-流行病学传染病学分册, 2005, 32(1) :38-411
[8]Renouf V, Claisse O, Lonvaud -Funel A 1r poB gene:A target f or i 2
dentificati on of LAB cocci by PCR -DGGE and melting curves analy 2ses in real ti m e PCR [J ]1J M icr obi olMethods, 2006, 67(1) :162-1701
[9]张鋆1荧光实时定量PCR 技术初探[J ]1生命科学趋势, 2003, 1
(4) :1-281
(收稿日期:2009-08-20)
杆菌的初步研究[J ]1中国卫生检验杂志, 2006, 16(12) :1434-14361
[4]东秀珠, 蔡英1常见细菌系统鉴定手册[M]1北京:科学出版社,
20011