分子植物育种
分子植物育种,2006年,第4卷,第6(S)期,第83-90页MolecularPlantBreeding,2006,Vol.4,No.6(S),83-90
专题介绍Review
RNAi技术及其在作物遗传育种中的应用
卢东长城1,2梁荣奇2*
1首都师范大学生命科学学院,北京,100037;2北京市农林科学院北京农业生物技术研究中心,北京,100097*通讯作者,liangrq@hotmail.com
摘要Fire等(1998)发现在线虫中双链RNA可以有效地阻断同源基因的表达,并将这一现象称为RNA
干扰(RNAinterference,RNAi),从而获得了2006年的诺贝尔生理学/医学奖。RNA干扰是指由双链RNA引发的专一性沉默同源基因的现象,它可以专一性降解同源基因的mRNA或修饰同源基因的启动子。目前有
3种转基因方法可以引起植物内源基因的RNA沉默:产生双链RNA转录本的反向重复RNAi(IR-RNA)、反义RNA(anti-senseRNA)技术和正义过量表达外源基因(senseRNA)。RNAi技术作为一种下调表达技术,现在已经开始应用于许多作物的遗传改良以及外来病毒的基因沉默。本文综述了目前RNAi技术在作物重要功能基因的鉴定、抗病毒作物的培育、降低有害物质含量或提高有益物质含量以改良作物品质、增加工业原料的含量等方面的研究进展。随着人们对作物代谢调控和RNAi机制的进一步认识,RNAi技术必将在作物遗传育种中得到更为广泛地应用。
关键词RNA干扰,遗传育种,小干扰RNA,功能基因组
RNAianditsApplicationsinCropGeneticsandBreeding
LuDongchangcheng1,2LiangRongqi2*
1CollegeofLifeScience,CapitalNormalUniversity,Beijing,100037;2BeijingAgro-BiotechResearchCenter,BeijingAcademyofAgriculturalandForestryScience,Beijing,100097
*Correspondingauthor,liangrq@hotmail.com
AbstractFirefoundthatdouble-strandedRNAcouldverysuccessfullysuppresstheexpressionofahomologicalgenein1998,andthisphenomenonwastermedRNAinterference(RNAi).RNAiisahomology-dependentgenesi-lencingphenomenathatistriggeredbythepresenceofadouble-strandedRNAdirectedagainstmRNAofageneorthepromoterregionofagene.TherearethreetypesoftransgenesthatcantriggertheRNAsilencingofendoge-nousplantgenes:invertedrepeatRNAinterference,antisense-RNAtechnologyandsenseover-expressiontrans-genes.Thistechnology,asaknockdowntechnology,hasbeenappliedtoawiderangeofspeciestosilencetheex-pressionofbothspecificgenesandgenesofinvadingvirusesforcropgeneticsbreeding.Theadvancesofitsappli-cationingenefunction,virusresistance,theimprovementofcroptraitsbydecreasingdisproductscontentorin-creasingdesireproductscontent,andthebenefittoindustryincropgeneticsandbreedingwerereviewedinthispaper.LearningmoreaboutmetabolicregulationofcropandRNAimechanism,researcherswouldmakeRNAimorewidelyavailableforcropgeneticsbreeding.
KeywordsRNAi,Cropgeneticbreeding,siRNA,Functionalgenome
为了克服传统育种方法的局限,利用遗传工程技术引入基因获得新性状、或者消除基因去掉坏性状,已经广泛地、成功地应用于植物遗传改良和育种中。近年来,转录后基因沉默(post-transcriptionalgenesilencing,PTGS)已广泛地用于下调(down-regu-
late)植物代谢过程中的某些关键酶。PTGS发生在细胞质中,基因能够转录产生mRNA,但mRNA在细胞质中被特异性地降解。
最近,植物RNA干扰(RNAinterference,RNAi)技术已经用于高效、特异地沉默特定的植物基因
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分子植物育种
MolecularPlantBreeding
(Smithetal.,2000;Kusaba,2004;Jones,2005)。RNAi
并以之为模板合成dsRNA。细胞中的RNaseⅢ家族
被Science杂志评为2001、2002年度自然科学10大成员将dsRNA结合降解成21 ̄23nt的小干扰RNA突破之一,是目前分子生物学和遗传学研究热点。(smallinterferenceRNA,siRNA)。在果蝇中,这种
其中一条Fire和Mello因在RNAi研究中做出了开创性工作RNaseⅢ被称为Dicer酶。siRNA解螺旋,而获得了2006年的诺贝尔生理学/医学奖。RNAi技术已经成为功能基因组研究、基因工程和生物医学的重要研究方法之一。
链(一般偏好于反义链)进入RNA诱导沉默复合体(RNA-inducedsilencingcomplex,RISC)。siRNA的反
义链随即与mRNA杂交,引导RISC在其附近对mRNA进行切割。siRNA也可能被装配到RNA诱导转录沉默复合体(RNA-inducedtranscriptionalsilenc-ingcomplex,RITS),进而引起包括DNA和组蛋白甲基化在内的染色质沉默(Verdeletal.,2004)。1.3RNAi技术分类
RNAi技术,就是将体外合成的dsRNA(19 ̄23bp)导入生物体,或者经过适当构建的在生物体内能表达形成dsRNA的特殊结构载体导入生物体,引起内源同源基因的表达抑制。
与传统的理化诱变、T-DNA插入突变等方法相比,RNAi技术具有以下优越性(Hannon,2004;黄冰艳,2004):①特异性:序列特异性的RNA及其蛋白质功能丧失或降低,从而无需大量筛选、鉴定和分离突变植株;②高效性:少量dsRNA就能导致内源基因几乎100%的沉默;③多效性:通过仔细地选择靶基因序列片段(植物RNAi一般为600 ̄1000bp),可
1RNAi的机理和分类
1.1RNAi的发现
Napoli等(1990)将由强启动子控制的色素基因CHS(查尔酮合酶)导入矮牵牛,以加深花的紫色,结果发现许多花瓣颜色并未加深,反而呈杂色甚至白色。他们把这一现象称之为共抑制(cosuppresion),用以定义所转入外源基因和同源内源性基因的表达同时减弱的现象。随后,Guo和Kemphues(1995)在线发现正义RNA和反义RNA虫的par-1基因研究中,都可以抑制基因的功能。
Fire等(1998)研究证明,在正义RNA阻断基因而这些双表达试验中,真正起作用的是双链RNA,链RNA是体外转录正义RNA时生成的,并将这一现象称为RNAinterference。在后来的实验中,人们在植物(Vaucheretetal.,1998;Waterhouseetal.,2001;Baulcombe,1999)、真菌(CogoniandMacino,
选择性沉默某一基因家族中的单个基因、部分甚至
④可选择性:通过采用不同的涡虫(Sánchez-AlvaradoandNewmark,1999)、全部家族基因的表达;1997)、
如诱导型、组织特异型,来抑制某一发育阶果蝇(KennerdellandCarthew,1998)、小鼠(Wianny启动子,
某一器官的基因表达。andZernicka-Goetz,2000)等多种生物中发现了段、
有3种转基因方法可以引起植物内源基因的RNAi现象,所以认为,RNAi是真核生物中普遍存在
RNA沉默:产生双链RNA(dsRNA)转录本的反向重的现象,RNAi是生物进化过程中比较保守的机制。
复转基因(invertedrepeatRNAinterference,
1.2RNAi的作用机理
IR-RNAi),反义RNA技术(anti-senseRNA)和正义过
RNAi在两个不同的水平上起作用:一是在转录量表达外源基因(又称Sense-RNAi)(表1)。后基因沉默(post-transcriptionalgenesilencing,PT-多年来,人们已经使用反义RNA技术研究了很GS),其特点是基因能够转录出mRNA,但mRNA被多基因的功能,在果实性状及品质改良、提高作物的迅速地降解,从而失去功能;二是转录基因沉默(tran-抗病性上都有广泛的应用。其基因操作也较scriptionalgenesilencing,TGS),相应基因座上的IR-RNAi简单,所以虽然它沉默效率和稳定性不高,DNA和组蛋白发生甲基化修饰,改变DNA或染色质的结构,从而抑制基因的转录。共抑制现象通常和PTGS和TGS两个水平相关(Kusaba,2004)。
这两种水平的RNAi都和双链RNA(dou-ble-strandedRNA,dsRNA)相关。RNA依赖的RNA聚合酶(RNA-dependentRNApolymerase,RdRP)可识别异常RNA(病毒RNA、细胞内异常表达的RNA)
但目前仍然是作物遗传育种中重要的分子生物学技
术之一。
反向重复RNA干扰(IR-RNAi)转基因技术通常是这3种方法中最有效的,具有高效而稳定的特点。
最有效的双链RNA构件是能转录发植物RNAi中,
夹RNA(hairpinRNA,hpRNA)(Smithetal.,2000)。在这种类型结构中,靶序列的2个拷贝作为反向重
RNAi技术及其在作物遗传育种中的应用
RNAianditsApplicationsinCropGeneticsandBreeding
表1三种RNAi技术的特点
Table1CharactersofthreeRNAitechnologies方法MethodsAntisenseRNAIR-RNAiSense-RNAi
结构Structure反义链Antisensestrand反向重复序列Invertedrepeats正义链Sensestrand
对拷贝数的要求Requiredforcopynumber未见报道Noreport<3个拷贝<3copies不要求No
效率和稳定性Efficiencyandstability效率低、稳定性差Inefficient,unstable效率高、稳定性好Efficient,stable
高拷贝时,效率高、稳定性好Whenhighcopy,efficientandstable
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操作难易程度Difficulty简单Easy较复杂Moredifficult简单Easy
复序列而被串联插入,在反向重复序列中间一般插
入一个内含子。Helliwell和Waterhouse评价了植物中3类高通量基因沉默的表达载体及其构建方法,认为将间隔区内含子(spacerintron)插入反向互补重复区,可以增强其稳定性(Wesleyetal.,2001)。植物RNAi除了比Sense-RNAi和反义RNA(antisenseRNA)更稳定高效外,在抑制多基因家族基因方面比基因突变更具优势(Kusaba,2004)。Stoutjesdijk等(2002)研究表明基因抑制效果可在子代稳定遗传,首次明确了该技术在作物遗传改良方面的应用潜力。目前,大部分的研究都围绕IR-RNAi进行。但事实上,反向重复RNA在生物体中也是一种异常RNA,尤其是在转基因高拷贝时,可能被细胞内的RNAi系统所识别,反向重复RNA的转录就会被这个系统所沉默。如果出现这样的情况,就不能达到通过IR-RNAi沉默相应基因的目的。在矮牵牛查尔酮合酶(CHS)的IR-RNAi研究中发现转基因拷贝数达到3个或3个以上的转基因植株的查尔酮合酶基因沉默水平较拷贝数1个或2个的转基因植株明显降低(Sijenetal.,2001)。同时,由于反向重复的存在,可能会出现因为同源重组导致反向重复丢失的现象。
共抑制(cosuppresion)可简单定义为所转入的外源基因和同源内源性基因的表达同时减弱的现象,是与外源基因和同源内源性基因共表达(coexpres-sion)状态相反的一种状态(Napolietal.,1990;vanderKroletal.,1990)。由于共抑制的含义主要指一种结果(而不是一种机制),因此,转录或转录后基因沉默都可归因于共抑制的发生。Jorgensen(2005b)等将Sense-RNAi作为一种功能基因组方法来研究特异细胞或组织中变异的发生。但是,目前Sense-RNAi技术进行基因功能研究的报告很少,因为Sense-RNAi低拷贝转基因时有与反义RNA技术同样的沉默效率和稳定性不高的缺点。但是在Sense-RNAi转基因的拷贝数较高的情况下,Sense-RNAi的沉默效率和
稳定性会大为提高。这一点为Sense-RNAi技术在作
物遗传育种上提供了广阔的应用前景,因为目前基因枪仍然是大多数的单子叶作物的遗传转化的主要手段,而基因枪转化很容易得到高拷贝的转基因植株,不易得到单拷贝或者低拷贝的转基因植株。
2RNAi在作物遗传改良中的应用
2.1农作物重要功能基因的鉴定2.1.1RNAi在反向遗传学上的应用
将功能未知的基因编码区(外显子)或启动子区,以反向重复的方式由同一启动子控制表达,在转基因个体内就可转录出RNA形成dsRNA,产生RNA干扰,使目的基因静默,进一步研究目的基因的功能。
高等植物的基因组存在大量的冗余。传统的插入突变导致一个基因家族的某一个成员失活后,家族的其他成员可以弥补其功能,这样往往观察不到基因对应的表型。RNAi技术可以简单快速地抑制一个基因的表达,而且能够通过选择不同的作用位点分别或同时作用于同一基因家族的若干个成员,因此RNAi技术是研究基因家族功能的理想工具。RNAi技术引起的突变是显性的,因此杂合的突变株就可以观察到突变表型,而RNAi载体的插入位点一般不会影响沉默效果。因此RNAi技术的操作更为简单易行,目前RNAi技术已经十分广泛地应用于基因功能的反向遗传学研究,例如Lee等(2004)利用RNAi技术和过表达操作研究OsMADS50基因的功能,表明OsMADS50是水稻中控制多种开花相关调控因子的重要开花活化因子,Gupta等(2002)用RNAi抑制拟南芥菜AtPTEN1基因在花粉粒中的表达,导致花粉细胞在有丝分裂后死亡推测AtPTEN1基因是和花粉特异磷酸酶有关的基因,对花粉发育有重要作用,Miyoshi等(2003)用RNAi技术抑制3个OsHAP3基因的表达,发现这3个OsHAP3基因中
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的1个或多个基因控制核编码的叶绿体目标基因的表达和叶绿体的正常发育。
但是用RNAi技术得到的突变植株,不能通过转入野生型基因的方法恢复野生型,也就不能通过功能互补的方法来证明突变表型确实是由此目的基因的失效引起的。Sijen等(2001)利用TGS来抑制RNAi载体上35S启动子的活性,使野生型得到恢复。这个实验体系可以很好地说明突变表型确实是由PTGS引起的而和外源片段的插入无关。2.1.2用RNAi技术构建突变体库
在功能基因组研究中,人们通常先用物理、化学的方法或者T-DNA法、转座子法构建一个突变体库,然后从这个库中挑选兴趣的突变型进行研究,找到相关的基因。
目前,IR-RNAi技术作为反向遗传学技术广泛应用于1个或几个植物基因的功能研究,但由于要构建含有反向重复序列的载体,因此很难应用于大规模的植物功能基因组研究。
构建一个由强启动子启动的载体,把cDNA文库或者3'-UTR文库插入到强启动子后面,然后用这个文库转化植物,就可以得到大量Sense-RNAi植物。因此,Sense-RNAi有可能成为可用于大规模的植物功能基因组研究的一项新技术。2.1.3用VIGS技术研究基因功能
传统的正向遗传学方法通常包括T-DNA或转座子的插入突变。这些方法帮助人们发现了很多基因,但如果要研究的基因是细胞基本活动或个体早期发育所必需的,由于插入通常引起基因的完全失活,因此一般不能得到突变型胚细胞,或得到胚细胞却无法观察到基因产物在植物整个发展过程中的细胞学(或生物化学)功能。靶基因是致死基因的VIGS和插入突变一样会引起植物的死亡,但其引起的死亡过程可能比插入突变引起的死亡提供更多的信息;而且可能通过靶序列的选择只引起基因的部分沉默,可得到存活的表型。VIGS技术和其它RNAi技术一样可以利用基因家族的同源性同时沉默家族中的多个基因,避免基因冗余对表型观察的影响。
因此,VIGS作为基因功能研究的重要技术,具有简单、快捷、高通量的特点。但分离鉴定可用于感兴趣的宿主植物的病毒比较困难,而且病毒的感染可能会影响对被沉默基因的表型观察(Ratcliffetal.,2001)。2.2培育抗病毒作物
植物通过特异地降解病毒RNA的方式沉默病毒基因而获得对病毒的抗性。有学者把植物的这些抗性称为植物的免疫。人们把植物病毒基因转入植物体内,病毒基因转录出的RNA被宿主编码的RdRP识别并合成dsRNA,进而引起后续的PTGS反
应,使植物获得对该种病毒的抗性。人们已经在多种
病毒诱导基因沉默(virus-inducedgenesilencing,植物中证明了RdRP的存在。也有实验表明,用反向VIGS)是用来分析植物基因功能的另一RNAi技术。重复序列转化植物,在植物中可直接表达出dsRNA,在用VIGS技术研究基因功能时,人们将感兴趣的植并不需要植物体内RdRP的作用(Wangetal.,2000;物基因的一个外显子片段插入到病毒载体中,替代Waterhouseetal.,1998)。对病毒复制和移动非必需的基因,也可以作为一个无论病毒的基因组是RNA还是DNA,目前几额外的片段直接插入。用经过基因改造后的病毒感乎所有主要植物病毒都有通过RNAi技术获得抗性染植物后,插入片段会作为重组病毒的一部分在植的报道,如抗水稻矮缩病毒水稻(RDV)(马中良等,物中复制并漫延。病毒复制过程中形成的双链RNA2004)、梅子脓泡病毒(plumpoxpotyvirus)(Guoand(dsRNA)启动植物的RNA介导的防御系统Garcia,1997)、水稻黄斑病毒(RYMV)(Pintoetal.,(RNA-mediateddefensesystem,RMD),随即引起和重1999)、马铃薯Y病毒(PVY)(Waterhouseetal.,组病毒序列相同的mRNA(即感兴趣的基因转录的1998)、烟草花叶病毒(TMV)(赵明敏等,2006)。mRNA)的降解(Constantinetal.,2004)。一般,从构建
2.3培育抗褐变的作物
病毒载体到感染植物后观察到植物的表型,只需要
苹果、梨、马铃薯等果蔬在生产、贮藏、加工过程9 ̄23d。遗传改造后的RNA病毒基因组cDNA也可
导致巨大的经济损失。植物组以接上一个植物的启动子,然后直接感染植物中经常出现褐变现象,
(Sablowskietal.,1995)或者利用根瘤农杆菌Ti质粒织的褐变和多酚氧化酶(polyphenoloxidase,PPO)有转化植物细胞(Turpenetal.,1993)。如果用病毒载体关,抑制PPO活性可以减弱这些作物的褐变程度。
然后分析大量的被感染植物,Bachem等(1994)用反义RNA技术抑制PPO活性,构建一个cDNA文库,
那么VIGS技术也可以用于正向遗传学研究。
培育出抗褐变转基因马铃薯。Coetzer等(2001)则同
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时用反义RNA技术和Sense-RNAi技术来抑制PPO活性,控制马铃薯的褐变。2004年,曹艳红等利用IR-RNAi技术成功地干涉了苹果多酚氧化酶。
目前,我们实验构建了由胚乳特异启动子启动的小麦籽粒PPO基因IR-RNAi载体(正义臂和反义臂之间插入了拟南芥FAD2的intron9),并已成功转化小麦(Liangetal.,2006),希望在不影响小麦的生
-zeins的表达量(该蛋白亮氨酸含量很低)得到了高α
亮氨酸玉米突变体。之前的研究表明调控α-zeins表达的转录因子opaque2的缺失会提高亮氨酸的含量,但这一缺失降低了玉米的品质和产量。Davuluri等(2005)利用一个果实特异启动子在番茄中沉默内源的光形态发生调控基因DET1,提高了类胡萝卜素
和类黄酮含量,但却不影响野生型的其他特性。番茄
长、抗逆性的前提下(不影响茎叶组织的PPO合成),DET1基因的突变会导致highpigment-2(hp-2)表型。
而高水平的色素含量正是特异地抑制小麦籽粒中PPO合成,从而减弱面粉及这一表型的色素含量很高,
类胡萝卜素和类黄酮含量提高的原因,但DET1基因其面食品在加工、贮藏中的褐变,提高面粉白度。2.4降低作物中有害物质的含量
一些作物中的某些物质对人类的健康有害,或对某些人群有不良反应。目前,人们已经用RNAi技术在几个作物中降低了某些有害物质的含量,为人
类提供更为健康、更为个性化的食品。例如在油炸加工过程时,多不饱和脂肪酸通过氢化作用生成反式脂肪酸,生成胆固醇,增加人体的心血管疾病发病几率。Liu等(2002)利用反义RNA和IR-RNAi技术以不饱和脂肪酸合成的2个关键基因ghSAD-1和gh-FAD2-1为目标分别转化棉花Coker315引起PTGS抑制目标基因,分别得到了高硬脂酸和高油酸的转化植株,然后利用两者杂交产生的F2分离群体得到了高硬脂酸和高油酸的棉花植株。Jorgensen等(2005a)用反义RNA技术和IR-RNAi技术抑制亚麻苦苷和百脉根苷合成途径中的2个关键酶CYP79D1和CYP79D2的表达,得到的转基因木薯块茎中含氰苷含量降低92%、叶子中氰含量低于野生型氰含量的1%。Ogita等(2003)利用RNAi的方法对可可碱合成酶基因的表达进行抑制,使植株中的咖啡因含量比原来减少了70%,为对咖啡因过敏的人群提供了低咖啡因咖啡。2.5提高作物的营养价值
用RNAi技术来提高作物中营养物质含量的例子并不多见,该类RNAi应用研究有赖于对作物新陈代谢时空调控更为细致的认识。
Kinney(1996)利用正义—共抑制(senseRANi)技术,降低△12脂肪酸脱氢酶的活性,从后代中选育出油酸超过80%的转基因大豆。Stoujesdijk等(2002)也用该技术将△12脂肪酸脱氢酶基因沉默,从而使甘蓝型油菜和芥菜型油菜中的油酸含量分别升高到89%和75%。
Segal等(2003)用RNAi技术下调玉米贮藏蛋白
的缺失突变同样会影响番茄的产量和其它品质。2.6增加工业加工原料在作物中的含量
农业为工业提供大量的原材料,因此如何提高
工业加工原料在作物中的含量,降低原料纯化的成本,是作物遗传育种要解决的一个重要问题。利用RNAi技术改变代谢的物质流方向,通过抑制作物中其它成分的合成来提高工业加工原料在作物中的含量,无疑是一种十分有效的方法。
直链淀粉是重要的工业原料,在轻工业(可降解薄膜、工业酒精、胶卷和粘合剂等)、食品加工业和制药业等领域有广阔的应用前景。玉米目前是我国最主要的工业加工作物之一,其籽粒的淀粉含量为70% ̄75%,但普通玉米的直链淀粉只占总淀粉含量
高直链玉米淀粉是指直链淀粉含量在总淀粉的1/4。
含量的50%以上的玉米淀粉,只有高直链玉米淀粉
才具有商业开发价值。玉米的支链淀粉由SBEⅡa、SBEⅡb和SBEⅠ3种淀粉分支酶催化合成,其中SBEⅡa主要存在于叶片中,而SBEⅡb和SBEⅠ主要催化胚乳的支链淀粉合成。柴晓杰等(2005)在35S启动子和NOS终止子之间加入sbeⅡb基因片段的反向重复序列,然后用花粉管导入法转化玉米,最后得到淀粉分支酶活性降低约85%、直链淀粉含量提高到约50%的玉米植株。
目前,我们实验室用基因sbeⅡb和sbeⅠ的末端编码区(约200bp)、3'末端非编码区(3'-untranslated
用基region,3'-UTR)构建了2个Sense-RNAi载体,希望得到因枪同时或分别转化玉米(Luetal.,2006),
高拷贝的转基因玉米,通过筛选后代植株得到稳定遗传的高直链淀粉玉米。此外,我们还构建了这2个基因的hpRNAi表达载体(Guoetal.,2006)。
3RNAi技术展望
RNAi技术是一项抑制基因表达的技术,作用的
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MolecularPlantBreeding
目标只能是作物原有的基因而不能引入新的基因,致谢因此要利用RNAi技术提高作物的品质必须对植物
本研究由国家自然科学基金(30500321,302708
组织代谢网络和时空调控有深入的了解并据此设计
32)、北京市农林科学院青年科研基金项目(2006-15)
巧妙的实验方案。
资助。
在作物中,人们收获的部分(一般是种子)和作物生长所需部分的组织是不同的,组成性的基因改造可以改进种子的品质却往往不利于植物其它器官的生长,因此在进行基因工程作物育种中,基因的时空调控十分重要。虽然利用组织特异的或可诱导的启但是RNAi现象可动子可以调控RNAi的时空表达,
以在植株内系统蔓延(Waterhouseetal.,2001;Klahre所以当RNAi现象在一个特定的组织中etal.,2002),
表达时,RNAi现象也可能出现在其它并不希望出现的组织中。利用抑制PTGS信号系统性蔓延的病毒蛋白或者突变植物中和RNAi信号蔓延相关的基因也许可以决定这个问题。Chen等(2003)也报道了一种乙醇诱导的体系没有RNAi信号蔓延的现象。
RNAi的作用位点要经过精心选择。位点选择不当还常常会导致脱靶效应(off-targeteffect)。由于siRNAs和目标mRNA可以有一定的错配和间隙,因此siRNAs可能在一个基因组中作用于上百个潜在
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因为RNAi和物化诱变、插入突变相比有其独特的优势,而植物存在多基因家族或多倍体现象,所以RNAi技术在作物遗传育种中可以敲除不良基因,创造新变异、新基因型。RNAi技术已经应用于作物遗传育种中多个方面,但是如何将RNAi技术更为广泛地应用于作物遗传育种中还需要进一步的研究。
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