家兔呼吸功能不全及治疗
实验三 家兔呼吸功能不全及治疗
一、实验目的
1．观察血液中化学因素（PCO2、PO2、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。
2. 通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。
3. 借助于血气指标分析判断窒息、气胸及肺水肿所引起的呼吸功能不全的类型，分析不同的情况下的治疗方法。 二、实验动物药品及器材
家兔，体重2.0-2.5kg ，性别不拘。 三、实验药品及器材
药品：20%乌拉坦，1%普鲁卡因，125U/ml肝素溶液，0.5%肝素，油酸 器材：手术器械，注射器（1ml 、5ml 、10ml 、20ml ），动脉导管，压力换能器，Y 型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪 四、实验方法
1. 抓取成年家兔一只，称重（2.009kg ），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml （0.5ml/100g*2.009kg=10.045ml)，作全身麻醉。家兔未完全麻醉，后补注4ml 乌拉坦，2min 后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射, 视为麻醉完全。用棉绳将家兔仰卧位固定在手术台上。
2. 将呼吸换能器固定在铁支架上，输出线连接生物信号采集系统的通道。将压力换能器固定于铁架上，其位置应与仰卧家兔心脏在同一平面，输出线连接生物信号采集系统。在电脑的软件系统中找到呼吸运动及心电图记录，调节仪器参数。 3. 经耳缘静脉注射125U/ml肝素3ml 进行全身肝素化。
4．剪去颈前部兔毛，喉头部正中切开皮肤，逐层钝性分离家兔颈前组织，暴露气管及颈总动脉。用止血钳分离气管，在气管下穿两根结扎线备用。皮下注射局麻药0.8ml 。
动脉插管 用细线结扎远心端，做颈动脉插管，结扎固定导管，推注少许肝素以防凝血，接上三通管记录血压。
气管插管 剥离气管表面毛细血管，在环状软骨下1cm 处做倒T 型剪口，用棉签将气管切口及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺部插入。用粗结扎线将插管口结扎固定，另一结扎线在切口的头端结扎止血。用温热生理盐水纱布覆盖手术野。
5．16:32开始记录，监测正常血压、心率、呼吸频率，描记一段正常的血压图和呼吸运动曲线，如图1、2。以监测值作为正常对照值，如表1、2。用听诊器听心音强度、肺部呼吸音。
第一次血气分析 16:34于三通管处抽出少量兔血，进行血气分析，如附表1。 6．疾病模型复制
1）复制阻塞性通气障碍：
A.用止血钳将Y 型气管插管上端所套橡皮管完全夹闭（16:56），并于完全夹闭的橡皮管上插2个九号针头，造成动物不完全窒息5min ，17:01观察记录呼吸频率、幅度及血压等的变化，如图3、4和表3、4。 B.立即解除夹闭，等待10min ，17:11观察记录各生理参数恢复状况，如图5、
6和表5、6。
2）复制限制性通气障碍：
A.于家兔右胸第4肋间插入16号针头（钝头），17:12注入空气45ml, 造成右侧气胸，观察各生理参数的变化状况，17:22记录各值如图7、8和表7、8。 第二次血气分析 17:22取动脉血进行血气分析，如附表1。
B.17:31用50ml 注射器将胸腔内空气抽尽，抽取35ml 并拔出针头，等候10min ，17:41观察记录家兔呼吸血压等生理参数恢复状况，如图9、10和表9、10。
3）再次复制阻塞性通气障碍：用弹簧夹将Y 型气管插管上端所套橡皮管几近完全夹闭（17:44），造成动物不完全窒息，做血气分析后立刻解除夹闭。 第三次血气分析 17:46取血做血气分析，如附表1。
7.17:50经实验指导老师认可耳缘静脉注入20ml 空气，处死家兔。 五、实验结果及数据 1.16:32观察记录正常值
1) 家兔正常血压记录（图1、表1）
2）家兔正常呼吸记录（图2、表2）
1）家兔血压记录（图3、表3）
1）家兔血压记录（图5、表5）
1）家兔血压记录（图7、表7）
1）家兔血压记录（图9、表9）
心跳停止，呼吸停止，说明家兔死亡。
附1：家兔血压变化状况 时间点：1——16:32正常值
2——17:01阻塞性通气障碍结果 3——17:11阻塞性通气障碍恢复 4——17:22限制性通气障碍结果