结核分枝杆菌快速药敏实验研究进展

　　[关键词] 结核分枝杆菌； 药敏实验； 研究进展

　　[中图分类号] R378.91[文献标识码] B[文章编号] 1005-0515（2011）-11-327-01

　　

　　结核分枝杆菌引起的结核病是全球范围内最普遍的慢性传染病之一，据估计全球有三分之一的人感染过结核分枝杆菌，亚洲地区占全世界受感染人群的三分之二。我国是全球22个结核病高发病国家之一，发病人数位居世界第二位，仅次于印度[1]。全国第四次结核病流行病学抽样调查显示，我国结核病疫情有高患病率、高耐药率、低递减率等特点[2]。耐多药结核分枝杆菌(multi-drug resistant TB,MDR-TB)的流行扩散使结核病的治愈率大幅下降，在初治和复治患者中的治愈率分别为40%和20%[3]，严重遏制了WHO结核病控制策略的实施及千年发展目标的实现，是全球结核病控制的一个难题。控制MDR-TB的关键在于早期诊断耐药菌株，及时制定有针对性的治疗方案，然而传统的结核杆菌药物敏感实验有生长依赖性，耗时长，需要6-8周才能报告实验结果，不能及时指导临床用药，因此，快速、敏感的结核杆菌药物敏感实验的研究成为全球关注的焦点，本文主要从快速的表型药敏实验和分子药敏实验两个方面进行综述。

　　1 表型药敏实验

　　1.1 氧化还原指示剂法(redox-indicator methods) 在接种有结核菌的液体培养基中加入各种不同浓度抗结核药物及氧化还原指示剂，孵育一定时间后，根据指示剂是否发生颜色改变来判断是否有该菌株生长，如指示剂发生还原反应，则提示有结核菌生长，说明该菌株在此药物浓度下对此种药物耐药。常用的指示剂有XTT、刃天青等。此法不需特殊仪器，成本低廉，平均10天即可回报结果，敏感性和特异性分别为91%和71%[4]，不足之处是特异性不强，容易因杂菌污染而导致假阳性结果。

　　1.2 噬菌体生物扩增法(Phageamplified biologically assay,PhaB) 结核分枝杆菌噬菌体能感染活的结核分枝杆菌, 未进入感染菌体内的噬菌体被随后加入的杀毒剂灭活, 进入菌体内的噬菌体在菌体内大量增殖, 最终将菌体裂解,在琼脂平板上出现透明的噬菌斑。加入抗结核药物的培养基内由于药物对结核菌的抑制，噬菌体不能感染死亡的菌体，导致噬菌斑不能形成，故而表现为敏感；反之，有噬菌斑形成的则为耐药菌株。该方法48小时内就可回报结果[5]。由于采用的结核杆菌噬菌体不同，导致该方法在临床应用中敏感性及特异性差异较大。

　　1.3 显微镜观察药物敏感度检测技术(microscopic observation drug susceptibility,MODS) MODS技术是一种对结核杆菌形态学进行显微镜观察和耐药性检测的一种液态培养方法。在液体培养基中，结核杆菌能够分泌索状因子，使其呈现特征性索状结构，该结构可通过倒置显微镜进行观察，确定是否有结核杆菌生长，以及对药物是否敏感。以传统的吕氏培养法做为金标准，Jin[6]等人用MODS法检测了66 株结核杆菌对4种一线抗结核药物：链霉素、异烟肼、利福平及乙胺丁醇的耐药情况，其敏感性分别为：97.0%，90.9%，95.5%和86.4%，说明MODS方法在耐多药结核杆菌的检测中有良好的应用前景。

　　2 分子药敏实验 随着分子生物学技术的发展，结核杆菌耐药的分子机制研究逐步深入，相关耐药基因的直接检测逐步成为研究热点。编码结核菌RNA聚合酶β亚基的rpoB突变使该酶活性改变，不能与利福平结合，因而表现为对利福平耐药。在临床分离的耐药结核菌中，86%的耐药株有rpoB的突变[7]。由于异烟肼和利福平是临床最常选用的一线药物，约90%的结核杆菌耐利福平同时也对异烟肼耐药，因此rpoB的突变的检测可作为耐多药结核杆菌的筛查实验[8]。katG及inhA调控区域的突变分别与异烟肼的高、低水平耐药密切相关[9]，但各国报道的突变率从50%-90%不等，说明存在种族及地区差异。其它药物的耐药机制出现频率相对较低，在分子药敏实验中的作用并不十分突出。以上述基础理论研究为基础，建立了许多检测耐药结核菌突变基因的分子药物敏感实验，无需培养，可直接检测各种标本，故又称为直接药敏实验。

　　2.1 PCR-限制性片段长度多态性(PCR-restriction fragment length polymorphism,PCR-RFLP)分析 通过检测DNA在限制性内切酶切割段落后形成的特定DNA片段的大小，来判断基因是否有突变。不足之处是只能根据已知突变位点来选择限制性内切酶，因此目前常用于katG 315和embB 306突变的检测[10-11]。RFLP分析对样品纯度要求高，样品的用量大，多态性水平几乎完全依赖于限制性内切酶的种类和数量，加之步骤繁琐、工作量大、成本较高，不适于临床样本的耐药性监测。

　　2.2 DNA测序 是检测基因突变的金标准，常作为其它实验方法的验证实验，并不适用于分析样本量巨大的临床标本。

　　2.3 PCR-单链构象多态性(PCR-single strand conformational polymorphism,PCR-SSCP)分析 在低温条件下，单链DNA呈现一种由内部分子相互作用形成的二级结构，只要单个碱基的突变即可引起DNA在非变性凝胶中的迁移率的改变。在对163株耐砒磷酰胺结核菌的检测中，PCR-SSCP的敏感性和特异性分别为85%和96%[12]。Negi[13]等人用PCR-SSCP发现与利福平耐药有关的rpoB的突变位点最常见于第516、526和531位密码子，这为以检测耐药基因点突变的基础的分子药敏实验的设计提供了线索。

　　2.4 线性探针技术(line probe assay,LiPA) 通常包含数个寡核苷酸探针，分别用以扩增相应的与耐药有关的基因。Hain Lifescience生产的Genotype MTBDR 和Genotype MTBDRplus 就是依据此原理而建立，检测是否有rpoB，katG及inhA突变，从而预测菌株是否对利福平和异烟肼耐药。由于基因突变的复杂性，该方法用的寡核苷酸探针数目较多，操作复杂，且费用较高，不适用于在基层实验室开展。

　　2.5 DNA芯片技术 可实现自动化检测，能同时快速、特异地检测多种抗结核药物的耐药基因，但是比较昂贵，难以推广。

　　由此可见，与传统的结核杆菌药敏实验相比，分子药敏实验不需对活菌进行培养，生物安全性高，检测快速，1-2天即可回报结果，从而及时指导临床医生制定合理治疗方案，对于预防耐药结核菌的流行扩散具有重要意义。目前的分子药敏实验普遍存在着操作繁琐，在痰涂片阴性培养阳性的标本中灵敏度低的问题，因此，简化分子药敏实验的实验步骤、提高灵敏度和特异性成为当务之急。

　　参考文献

　　[1] Katherine Floyd,Léopold Blanc,Dennis Falzon,Christopher Fitzpatrick.Global tuberculosis control: a short update to the 2009 report[R].World Health Organization,2009.

　　[2] 全国结核病流行病学抽样调查技术指导组.2000年全国结核病流行病学抽样调查报告[J].中国防痨杂志,2002,24(2):71-102.

　　[3] Esp inal MA,Kim SJ,Suarez PG,et al.Standard short-course chemotherapy for drug 2 resistant tuberculosis: treatment outcomes in 6 countries[J].JAMA,2000,283(19):2537-45.

　　[4] Anandi M,Andre s C R,Andrea V G,et al.Nitrate reductase assay for the rapid detection of pyrazinamide resistance in Mycobacterium tuberculosis using nicotinamide[J].J Antimicrob Chemother,2008,61:1237.

　　[5] Hamidou T,Sam O,Kim M,et al.Low-cost rapid detection of rifampicin resistant tuberculosis using bacteriophage in Kampala,Uganda[J].Ann Clin Microbiol Antimicrob,2007,6:1.

　　[6] Jin WG,Zheng RJ,Wang J,et al.Detection on drug resistance of Mycobacterium tuberculosis by microscopic observation drug susceptibility[J].Zhonghua Yu Fang Yi Xue Za Zhi,2009,43(1):24-7.

　　[7] Tracevska T,Jansone I,Broka L,et al.Mutation in the rpoB and katG genes leading to drug resistance inMycobacterium tuberculosis in Latvia[J].J Clin Microbiol,2002,40(10):3789-92.

　　[8] 申阿东,杨永弘,江载芳等.结核分支杆菌耐药性的分子机制研究进展[J].Int J Pediatr,2006,33:153-5.

　　[9] Vilcheze C,Wang F,Arai M,et al.Transfer of a point mutation n Mycobacterium tuberculosis inhA resolves the target of soniazid[J].Nat Med,2006,12:1027-9.

　　[10] Ahmad S,Jaber AA,Mokaddas E,et al.Frequency of embB codon306 mutations in ethambutol- susceptible and resistant clinical Mycobacterium tuberculosis isolates in Kuwait[J].Tuberculosis,2007,87:123-9.

　　[11] Marttila HJ,Makinen J,Marjamaki M,et al.Prospective evaluation of pyrosequencing for the rapid detection of isoniazid and rifampin resistance in clinical Mycobacterium tuberculosis isolates[J].Eur J Clin Microbiol Infect Dis,2009,28:33-8.

　　[12] Sheen P,Méndez M,Gilman OH,et al.Sputum PCR-single-strand conformational polymorphism test for same-day detection of pyrazinamide resistance in tuberculosis patients[J].J Clin Microbiol,2009,47(9):2937-43.

　　[13] Negi SS,Singh U,Gupta S,et al.Characterization of RPO B gene for detection of rifampicin drug resistance by SSCP and sequence analysis[J].Indian J Med Microbiol,2009,27:226-30.