端粒_端粒酶与间充质干细胞衰老的研究进展
实用医学杂志年第卷第期
4603
·综述·
端粒、端粒酶与间充质干细胞衰老的研究进展
间充质干细胞(MSCs )是来源于发育早期中、外胚层的多能干细胞,存在于骨髓、胎盘、脐带血、外周血等组织中,出生后在所有组织中定居[1-2],具有向成骨细胞、成脂细胞、肝脏细胞、心肌细胞和神经细胞等多系列细胞分化潜能,且支持造血、调节免疫、对损伤的组织和器官具有良好的修复效果。MSCs 体外培养扩增后保留多向分化潜能,易于外源基因转染和表达,是细胞治疗和基因治疗的理想靶细胞。然而,间充质干细胞随传代培养次数增加逐渐出现衰老,限制其在临床的广泛应用,这促使科学家努力寻求一种有效延长MSCs 寿命而不改变其生物学特性的方法。本文对外源性端粒酶逆转录酶转入间充质干细胞对其寿命、自我更新能力和多向分化潜能及安全性做一综述。
1端粒与端粒酶
端粒(telomere )是真核细胞染色体
末端的特殊结构,由染色体末端DNA 与蛋白质组成。1938年,美国遗传学家
Hermann J ,Müller等用X 射线照射果
蝇时,发现染色体末端有某种特殊的保护结构,命名为末端基因(terminal
gene ),后改称端粒(telomere )[3]。之后许
多科学家证实端粒可保护染色体末端免于被化学修饰或被核酶降解,防止染色体在复制过程丢失或形成不稳定形式。端粒长度对细胞分裂次数具有决定性作用,端粒在复制过程中逐渐缩短,当缩短到一个临界值后,染色体末端稳定机制被破坏,导致细胞生理功能紊乱,进入危象期,最终死亡。端粒长度决定细胞寿命,通过测定端粒长度可预测细胞寿命,因此有人将端粒长度称为“生命时钟”。
端粒酶是一种具有特殊逆转录酶
doi :10.3969/j.issn.1006-5725.2010. 24.068作者单位:510630广州市,暨南大学
附属第一医院血液科
覃永亮
曾慧兰
活性的核糖核蛋白复合物。1989年,Morin 教授[4]在子宫癌细胞株中发现人
类活性端粒酶,主要由三部分组成:端粒酶RNA (telomere RNATR )、端粒蛋白(telomerease protein TEP )和端粒酶逆转录酶
(human telomerase reverse
transciptase TERT )。其中hTERT 和
hTR 是最关键结构。人端粒酶RNA 有455个核苷酸,模板区为5′-CUAACCCUAAC-3′,指导端粒重复序列(TTAGGG )的合成,hTR 的结构改变或
成分的丢失均会影响端粒酶活性。
hTERT 为端粒酶的催化亚基,是一个包含1132个氨基酸残基的多态链,具有逆转录酶共同结构7个蛋白质域以及端粒酶催化亚基独特T 框架保守区域,其编码基因位于染色体5p 上,hTERT 是端粒酶起作用的关键结构和主要调控亚单位,可通过逆转录hTR 模板序列,合成端粒DNA 重复序列并
添加到染色体末端,从而延长端粒长度。hTERT 只在有端粒酶活性的细胞中,如生殖细胞、各种具有分裂增殖能力的细胞和绝大多数肿瘤细胞表达,并与端粒酶活性呈正相关。端粒酶活性阳性细胞中的hTERT 基因突变或沉默,则细胞端粒酶活性消失;在端粒酶阴性的细胞中导入编码hTERT 的基因,则可重建细胞的端粒酶活性,使细胞的端粒增长,寿命延长,甚至出现永生化现象
[5]
。
2端粒酶与间充质干细胞
绝大多数正常体细胞检测不到端
粒酶活性。端粒酶活性主要在生殖细胞、造血干细胞及大多数肿瘤细胞中可检测到。目前关于MSCs 的端粒酶活性表达水平尚存在争议,Zimmerman 等[6]发现无论是新鲜还是冻存后复苏的
MSCs ,其端粒酶均阴性。Singh 等[7]发现骨髓和骨赘中的MSCs 均有端粒酶活
性表达,但骨髓中的端粒酶活性强于骨赘,且随传代增加其活性渐减弱。
Tichon 等[8]发现端粒酶活性、端粒酶蛋白、端粒酶RNA 在健康供者MSCs 中
为阴性,而在肌萎缩性脊髓侧索硬化症(ALS )供者则阳性。MSCs 端粒酶活性的检测结果差异原因可能有三:一是检测敏感性不同;二是具有端粒酶活性的干细胞仅占干细胞群体的极少部分;三是维持端粒长度及细胞衰老还有别的因素,如端粒替代延长机制,也有学者认为是缺乏hTERT 基因[9]。机制尚未阐明。
3体外转入端粒酶逆转录酶对间充质干细胞生物学特性的影响
端粒酶活性及端粒长度的维持与
细胞衰老及分化潜能有密切关系,一般情况下细胞培养12代之后,端粒酶活性开始减弱[10]。hTERT 是端粒酶起作用的关键结构和主要调控亚单位。近年来,体外导入hTERT 提高细胞端粒酶活性、延长细胞寿命的研究备受关注。
科学家已成功将hTERT 转入
MSCs ,显著延长细胞寿命。张赛等[11]报道hTERT 转染后的脐血MSCs 高表达hTERT mRNA ,细胞体外扩增到35代未出现衰老现象。Wei 等[12]发现hTERT 转染后的第三代MSCs 增殖能力比普通MSCs 明显活跃,第60代转染MSCs 的凋亡速度明显低于第15代普通MSCs 。hTERT 转染后细胞增殖活力增强的原因可能是hTERT 直接作用或是
细胞永生化后的继发改变[13]。
有学者认为,端粒酶缺失的MSCs 不能分化为脂肪细胞和软骨细胞,而端粒酶永生化的MSCs 维持其原有分化潜能[14]。Yang 等[15]发现hTERT 转染后的MSCs 端粒酶活性增加,增长良好,并成功向成骨细胞、软骨细胞分化。
Abdallah 等[5]将hTERT 导入骨髓MSCs ,
细胞寿命延长,且不影响其向神经元与星形胶质细胞分化及异体海马移植存活能力。这说明MSCs 需要一定的端粒酶活性来维持其多向分化潜能,而转入
hTERT 基因就达到了激活细胞端粒酶
活性的目的。
端粒酶活性与肿瘤有密切联系,研究证实85%~90%的人类恶性肿瘤表
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达端粒酶活性。因此许多人认为端粒酶的异常激活是细胞癌变的重要一步。在干细胞中,端粒酶重新激活与累积将导致细胞永生化,并可能向高度恶性的白血病细胞或癌细胞转化[16]。因而对体外转染hTERT 后MSCs 的生物学特性及安全性进行评价非常关键。研究表明,导入外源性hETRT 不但不产生恶变,且能维持干细胞的自我更新能力及多向分化潜能。Nakahara 等
[17]
将hTERT
转染hMSCs 并建立永生化细胞株
YNKN-12,YNKN-12能向脂肪细胞、软骨细胞、成骨细胞分化,将YNKN-12细
胞移植于大鼠颅盖骨,损伤的颅盖骨得到很好的修复而无不良反应。许多研究表明肿瘤干细胞是许多癌症的起源。但间充质干细胞还较幼稚,分化程度较低,其端粒酶活性明显低于肿瘤干细胞的端粒酶活性,虽然其增殖能力强,但这种增殖能力与肿瘤细胞的无限增殖是不同的。Li 等[18]发现MSCs 传代扩增到30代开始出现衰老,其向成骨细胞、成脂细胞分化的能力下降,端粒长度下降,但端粒酶活性和核型均无变化,而与肿瘤相关基因如DBCCR1、
ARF 、p53,c-Myc ,K-ras ,B-raf ,N-ras 则
随传代次数增加而表达下降,将长期培养的MSCs 输注给小鼠并未诱导肿瘤形成。
由此可见,将hTERT 基因导入端粒酶阴性的细胞,重建其端粒酶活性,维持端粒长度,可延长细胞寿命,从而达到防治衰老的目的,这为干细胞的治疗应用提供了广阔的前景。
4结语
随着组织修复工程及移植医学的
兴起,种子细胞备受关注,MSCs 特有的生物学特性、多样化来源以及伦理的合法化,使其成为干细胞研究领域的热点。在解决细胞数量少,周期短的问题上,转染外源性hTERT 基因是个可以用来延长细胞寿命的有效的方法。然而不少问题有待解决,如hTERT 的调控机制及其与端粒酶协同作用机制;端粒酶表达和活性的调控机制等。生命衰老是非常复杂的进程,有复杂的影响因素,端粒参与的仅仅是其中机制之一。
关于间充质干细胞的衰老机制研究,尚需进一步深入。
5
参考文献
[1]
Jazedje T ,Perin P M ,Czeresnia C E ,et al.Human fallopian tube :
a new source
of
multipotent
adult
mesenchymalstem cells discarded in surgical procedures [J ].J Transl Med ,2009,18(7):34-42.[2]
董永飞,牛朝,高歌,等.PDGF 在骨髓间充质干细胞间胶质瘤趋化迁移过程中的作用[J ].中华神经医学杂志,
2009,(5):437-440.[3]
刘忠民,李刚.端粒-端粒酶与诺贝尔奖[J ].中国医药生物技术,2009,4(6):408-410.[4]
Morin G B.The human telomere terminal
trans
ferase enzyme is aribonucleoprotein that
synthes
izes
TTAGGG repeats [J ].Cell ,1989,59(3):521-529.[5]
Abdallah B M ,Haack S orensen M ,
Burns J S ,et al.
Maintenance of differentiation potential of human bone
marrow
mesenchymal
stem
cells
immortalized by
human
telomerase reverse transcriptase gene despite of extensive proliferation [J ].
Biochem
Biophys Res Commun ,2005,326(3):527-538.[6]
Zimmermann S ,Voss M ,Kaiser S ,et al.
Lack of telomerase activity in
human :ymal stem cells derived from stem cells [J ].Leukemia ,2003,mesenchymal
stem
cells
[J ].
Leukemia ,2003,17(6):1146-1149.[7]
Singh S ,Dhaliwal N ,Crawford R ,et al.Cellularsenescence and longevity of osteophyte-derived mesenchymal stem cells compared to patient-matched bone marrow stromal cells [J ].
Cell
Biochem ,2009,108(4):839-850.[8]
Tichon A ,Gowda B K S ,Slavin S ,et al.Telomeraseactivity and expression in adult human mesenchymal stem cells derived
from
amyotrophic
lateral
sclerosis individuals [J ].Cytotherapy ,2009,11(7):837-848.
[9]
Simonsen J L ,Rosada C ,Serakinci N ,et al.
Telomerase expression Extends
the proliferative life-span and maintains
实用医学杂志年第卷第期
the osteogenicpotentialof human bone marrow stromalcells [J ].Nat Biotechnol ,2002,20(6):592-596.
[10]王启伟,王万山,朴英杰,等.恒河猴骨
髓间充质干细胞的生物学特性[J ].解剖学报,2004,35(2):202-205.[11]张赛,刘振林,胡群亮,等.hTERT 介
导脐带问充质干细胞实现永生化的研究[J ].中华神经医学杂志,2008,
7(4):325-328.[12]Wei L L ,
Gao K ,Liu P Q ,et al.Mesenchymal stem cells from Chinese Guizhou
minipig by
hTERT
gene
transfection
[J ].
Transplant Proc ,
2008,40(2):547-550.
[13]Naka K ,Tachibana A ,Ikeda K ,et al.
Stress2induced premature senescence in
hTERT
expressing
ataxia telangiectasia fibroblasts
[J ].
Biol
Chem ,2004,279(3):2030-2037.[14]Wolbank S ,Stadler G ,Peterbauer A ,
et al.Telomerase immortalized human
amnion and adipose-derived mesench-ymal stem cells :
maintenance of
differentiation and immunomodulatory characteristics [J ].Tissue Engineering PartA ,2009,15(7):1843-1854.[15]Yang J ,
Cao C ,
Wang W ,et al.Proliferation and osteogenesis of
immortalized bone marrow-derived
mesenchymal
stem
cells
in
porous
polylactic glycolic acid scaffolds under perfusionculture [J ].
Biomed Mater
ResA ,2009,92(3):817-829.
[16]Kassem
M ,Abdallah B M ,Yu Z T ,et al.The use of hTERT-immortalized cells
in
tissue
engineering
[J ].
Cytotechnology ,2004,45(1):39-46.[17]Nakahara H ,Misawa H ,Hayashi T ,
et al.Bonerepair by transplantation of hTERT-immortalized human mesenchy-mal stem cells in mice [J ].
Transplantation ,2009,88(3):346-353.
[18]Li N ,
Yang R ,
Zhang W ,
et al.Genetically
transforming
human
mesenchymal stem cells to sarcomas :changes in cellular phenotype and multilineage differentiation potential
[J ].Cancer ,2009,115(20):4795-
4806.
(收稿:2010-08-04
编辑:张倩)