检验步骤(标准版)
1、鸡新城疫低毒力活疫苗(Lasota株)
1、安全检验
检验步骤:2~7日龄SPF鸡20只—→10只滴鼻免疫0.05ml(含10羽份);10只不接种对照—→
同条件分别饲养10日,因无不良反应(如有非特异性死亡,免疫对照组均不得超过1只)
疫苗稀释:500羽/瓶—→加2.5ml生理盐水即可(200羽/ml即20羽/0.1ml即10羽/0.05ml)
2、效力检验
检验步骤:按瓶签注明羽份(500羽/瓶),用灭菌生理盐水将疫苗稀释至1羽/0.1ml—→再进行
10倍系列稀释—→取3个适宜稀释度分别尿囊腔(AS)接种10日龄SPF鸡胚5枚(共
15枚)每胚0.1 ml—→37℃继续孵育120h—→48h前弃去;48~120h内死亡鸡胚收获尿
囊液(同一稀释度等量混合)分别测定红细胞凝集价;120h活胚逐个测红细胞凝集价(微
量法不低于1:128者判为感染)—→计算EID50,每羽份病毒含量应≥106.0 EID50.
疫苗稀释:500羽/瓶—→加5ml生理盐水(100羽/ml)—→10倍稀释(10羽/ml即1羽/0.1ml)
—→再进行10倍系列稀释(一般取10-5、10-6、10-7)
3、鉴别检验
检验步骤:将疫苗用生理盐水稀释至105.0 EID50/0.1ml—→与等量抗鸡新城疫特异性血清混合—
→室温作用60min—→尿囊腔(AS)接种10日龄SPF鸡胚10枚,每胚0.1 ml—→37℃
继续孵育120h—→24~120h内应不引起特异性死亡,且至少存活8枚;—→每枚鸡胚红
细胞凝试验应为阴性。
疫苗稀释:通过效力检验计算毒价,例如病毒含量为108.6 EID50/0.1ml要稀释至105.0 EID50/0.1ml,稀释103.6倍。
2、鸡新城疫中等毒力活疫苗(I系)
1、安全检验
检验步骤:2~8月龄健康易感鸡4只—→每只肌肉注射0.2ml???(含10个使用剂量)的疫苗
—→观察10~14日,允许有不良反应,但须在14日内恢复,疫苗判为合格。如有1
只鸡出现腿麻痹,不能恢复时,允许用8只鸡重检一次,重检结果如有1只鸡出现上
述同样反应,疫苗判为不合格。
疫苗稀释:500羽/瓶—→加5ml生理盐水(100羽/ml即20羽/0.2ml)—→再2倍稀释(10羽/0.2ml)
2、效力检验
检验步骤:按瓶签注明羽份,用灭菌生理盐水将疫苗稀释至1羽/0.1ml—→再进行10倍系列稀释
—→取3个适宜稀释度(如10-4、10-5、10-6)分别尿囊腔(AS)接种10日龄SPF鸡胚5
枚(共15枚)每胚0.1 ml—→37℃继续孵育24~72h—→记录鸡胚死亡情况,死亡胎儿应
有明显病痕。—→同一稀释度的死胚胚液等量混合,测定血凝价,[微量法不低于(1:64)
~(1:512)判为感染]—→计算EID50,每羽份病毒含量应≥105.0 EID50。
疫苗稀释:500羽/瓶—→加5ml生理盐水(100羽/ml)—→10倍稀释(10羽/ml即1羽/0.1ml)
—→再进行10倍系列稀释(一般取10-5、10-6、10-7)
3、鉴别检验
检验步骤:用灭菌生理盐水将疫苗稀释至103.0 EL D50???50/0.1ml—→与等量抗鸡新城疫特异
性血清混合—→室温作用60min—→尿囊腔(AS)接种10日龄SPF鸡胚10枚,每胚0.1
ml—→37℃继续孵育120h—→24~120h内应不引起特异性死亡,且至少健活8枚;—→
每枚鸡胚红细胞凝试验应为阴性。
疫苗稀释:通过效力检验计算毒价,
3、鸡痘活疫苗
1、安全检验
检验步骤:1~14日龄SPF鸡10只—→各肌肉注射0.2 ml(含10羽份)—→观察10日应全部健活
疫苗稀释:500羽/瓶—→加5ml生理盐水(100羽/ml)—→2倍稀释(50羽/ml即10羽/0.2ml)
2、效力检验
检验步骤:按瓶签注明羽份,将疫苗用生理盐水稀释至1羽/0.2ml—→再进行10倍系列稀释—→
取3个适宜稀释度经绒毛尿囊膜(CAM)分别接种11~12日龄SPF鸡胚5枚(共15枚)
每胚0.2 ml—→37℃继续孵育96~120h—→鸡胚绒毛尿囊膜水肿增厚或出现豆斑判为感
染—→计算EID50,每羽份病毒含量应≥103.0 EID50.
疫苗稀释:500羽/瓶—→加5ml生理盐水(100羽/ml)—→10倍稀释(10羽/ml即1羽/0.1ml)
—→2倍稀释(5羽/ml即1羽/0.2ml)—→再进行10倍系列稀释(一般取10-2、10-3、10-4)
NDV鸡新城疫病毒 FPV鸡痘病毒 IBV鸡传染性支气管炎病毒 IBDV鸡传染性法氏囊病毒 ILT鸡传染性喉气管炎病毒
4、猪多杀性巴士杆菌病活疫苗
1、安全检验
(1)小鼠检验:
检验步骤:18~22克小白鼠5只—→皮下注射0.2 ml(含1/ 30头份)—→观察10日应全部健活 疫苗稀释:50头份/瓶—→加5ml生理盐水(10头份/ml)—→10倍稀释(1头份/ml)—→6
倍稀释(1/6头份/ml即1/ 30头份/0.2 ml)
(2)豚鼠检验
检验步骤:300~400克豚鼠2只—→皮下注射2ml(含15头份)—→观察10日应全部健活
疫苗稀释:50头份/瓶—→加5ml生理盐水(10头份/ml)—→取3ml(10头份/ml 即30头份/3ml)
加1ml生理盐水—→30头份/4ml即(15头份/2ml)
2、效力检验
检验步骤:16~18克小鼠16只—→10只皮下注射0.2 ml(含1/ 150头份);对照6只—→14日后
10免疫和3只对照各皮下注射C44-1株强毒液30~40MLD;另3只对照注射1MLD
—→观察10日:注射30~40MLD的对照组小鼠应全部死亡;注射1MLD的对照组小
鼠应至少死亡2只;免疫组小鼠应至少保护8只。
疫苗稀释:50头份/瓶—→加5ml生理盐水(10头份/ml)—→10倍稀释(1头份/ml)—→1
0倍稀释(1/ 10头份/ml即1/ 100头份/0.1ml即1/ 50头份/0.2ml)—→3倍稀释(1/ 30
头份/ml 即1/ 150头份/0.2 ml)
5、鱼病多联抗体苗
一、种毒检验
1、无菌检验
2、蛋白含量测定
三、注意事项:
1、酶条有8孔和12孔两种规格
2、移液器用完后调至最大量程存放
二、半成品检验
1、无菌检验
2、浓度检验(ELISA
三、成品检验
1、物理性状。2、无菌检验。5、剩余水分。
3、安全检验:
检验步骤:5~7克,4~5月龄200尾 —→100尾腹腔注射10倍剂量;100尾不接种作对照 —
→观察30日应全部健活,若有非特异性死亡,应不超过10尾,且接种组不得超过对照
组。
注:1.接种量10倍剂量
4、效力检验: 定量分析法:至少应为69ug/ml)
检验步骤:5~7克,4~5月龄200尾 —→ 60尾腹腔注射免疫;60尾浸泡免疫—→30日后分
组攻毒 :
取未免疫的30尾做对照和腹腔注射免疫的60尾分3组(每组30尾:注射免疫的20尾,未免疫的对照10尾);取未免疫的30尾做对照和浸泡免疫的60尾分3组(每组30尾:浸泡免疫的20尾,未免疫的对照10尾)—→每种免疫方式分成的3个组,分别腹腔注射攻3种毒,每尾0.1ml(含5个LD50) —→观察7日,—→结果判定:对照组应至少死亡70%;注射免疫组保护率至少应为60%;浸泡免疫组至少30%
疫苗稀释:
四、不完全佐剂检验
(羊毛脂:石蜡油=1:9)
1、性状检测:不完全佐剂为淡黄色清亮液体。
2、无菌检验
3、安全检验:取体重5~7g、4~5月龄牙鲆鱼40尾,20尾腹腔注射50ul不完全佐剂;20尾不接种
作对照,同条件饲养,观察30日,应全部存活。若有非特异死亡应不超过2尾,且接种组非特异性死亡不得超过对照组。
五、用法用量
1、注射型疫苗
用生理盐水将每一瓶内疫苗稀释到25ml —→再与25ml的不完全佐剂等量混合均匀—→用1ml注射器进行腹腔注射接种(50ul/尾,含疫苗量3.75ug)。
2、浸泡型疫苗
用生理盐水将药盒内3只瓶内的疫苗溶解混合后,倒入装有90升海水的容器内充分搅匀,—→将1000尾5~7g、4~5月龄的幼鱼分2~3批放入其中浸泡,每批30min。每尾鱼的疫苗量为11.25ug。(接种浸泡前,应停食至少24h,浸泡时向海水内充气。海水温度在15~20℃为好。)
六、贮藏与有效期:-25℃一下保存,有效期11个月。
蛋白含量测定:
LD50
6、鸡球虫病三价活苗
一、半成品
毒力返强试验
检验步骤:将致弱处理的三种卵囊和一强毒株分别接种3日龄雏公鸡各10羽(每羽8000个卵囊)共40羽—→接种6~7天后分别收取卵囊—→再将此卵囊接种3日龄雏公鸡各10羽(每羽8000个卵囊)—→照此方法连续传5代。强毒株对照组也以同样方法连续传5代。—→第5代接种4~7天
后,剖杀所有试验鸡只,—→观察粪便和判定盲肠与小肠病变,—→结果判定:强毒组血便记分为+++~++++,强毒组病变记分为+3.5~+4分;致弱组粪便记分不超过+,病变记分≤+1分,判为合格。
二、成品
1、安全检验
检验步骤:将3日龄健康无球虫感染的雏鸡30羽分3组(10羽/组)—→分别用10倍和100倍使用剂量免疫其中2组,1组不接种作对照。—→结果判定:观察4~7天后,10倍量免疫组粪便记分为+,盲肠、小肠等部位病变记分在+1以下;100倍量免疫组无死亡,粪便记分为+~++,盲肠、小肠等部位病变记分在+2~+3,对照组无任何肉眼可见病变,疫苗判为合格。
2、效力检验
检验步骤:将3日龄健康无球虫感染的雏鸡40羽分2组(20羽/组)—→按免疫程序进行免疫,另20羽不免疫作对照。—→在第3次免疫后7天用9×104个强毒卵囊/羽(含三种球虫各3×104个强毒卵囊/羽)攻击两组鸡。—→结果判定:观察4~7天后,对照组粪便记分为++++,病变记分为+4分,死亡率在50%以上;免疫组无血便,无死亡,病变记分在+1以下,疫苗判为合格。
3、同笼试验
检验步骤:将3日龄健康无球虫感染的雏鸡20羽分2组(10羽/组)—→1组按免疫程序进行免疫,另1组不免疫(做标记)。—→两组鸡一起平养,至第3次免疫后的4~7天,观察试验鸡粪便并剖杀所有试验鸡,观察肠道病变。—→结果判定:所有试验鸡(含未免疫鸡)应无血便(+),盲肠、小肠病变记分均应在+1分以下,疫苗判为合格。
◆支原体检验
一、培养基
1、检验禽源细胞和由禽胚组织或其细胞制成的活疫苗 用改良Frey氏培养基。
2、检验其他种类细胞和病毒疫苗 用支原体培养基。
3、检验血清 用无血清支原体培养基。
二、检查法
1、样品处理
每批样品取5瓶。液体制品混合后备用;冻干制品,则加液体培养基()或生理盐水复原成混悬液后混合。检测血清时,用血清直接接种到不含血清的培养基内。
2、培养基准备
2.1 液体培养基 将冷冻保存的液体培养基融化,分装到小瓶(100ml瓶),20ml/瓶;小管
(1.0cm×10cm),1.8ml/支。
2.2 固体培养基 将固体培养基加热溶解,温度降至60℃左右时添加辅助液(添加时轻轻摇
动,以免出现气泡);按平皿规格(Ø90)倒入适量培养基。
2.3 培养基需要量
每批样品需要用培养基:小瓶1个(液体);小试管2支(液体),平皿2付(固体)。 阳性对照需要用培养基:小瓶1个(液体);小试管2支(液体),平皿2付(固体)。 阴性对照需要用培养基:小瓶1个(液体);小试管2支(液体),平皿2付(固体)。
3、对照
阳性对照 禽类疫苗用滑液支原体,其它疫苗用猪鼻支原体做阳性对照。
阴性对照 用同批培养基作阴性对照。
4、疫苗检测
(1)接种与观察
取5ml疫苗混合物接种于装有20ml液体培养基的小瓶,摇匀后,再从小瓶中取0.8ml移植到2支小管液体培养基(0.2ml/支);2付固体培养基(0.1~0.2ml/付)。液体培养物(小瓶与小管)置37℃培养,固体培养物(平皿)置含5%CO2培养箱培养。每日观察培养物有无颜色变化
(变黄或变红),观察14日。
分别于接种后5日、10日、15日从小瓶中取0.8ml培养物移植到2支小管液体培养基(0.2ml/支);2付固体培养基(0.1~0.2ml/付)。每次移植培养物均观察14日。
在观察期内,如果发现小瓶或任何一支小管液体培养物颜色出现明显变化,即pH值变化
达±0.5时,应立即移植于小管液体培养基2支和固体培养基2付。观察移植的液体培养基是否出现恒定的pH值变化;固体培养基培养3天后在40—100倍显微镜下观察有无典型的“煎蛋”状支原体菌落出现,经14日观察,仍无菌落者时,停止观察。
每次移植培养必须设阳性和阴性对照,在相同条件下培养观察。阳性对照:禽类疫苗用滑液支原体,其它疫苗用猪鼻支原体做阳性对照。阴性对照:用同批培养基作阴性对照。
5、血清的检测
取被检血清10ml接种90ml的无血清支原体培养基,培养基按
6、检验操作示意图
样品3~5ml
↓
20ml/瓶→0.2ml/小管 → 14天
↓ 0.1~0.2 ml/平皿
5天 →0.2ml/小管 → 14天
↓ 0.1~0.2 ml/平皿
10天→0.2ml/小管 → 14天
↓ 0.1~0.2 ml/平皿
15天→0.2ml/小管 → 14天
0.1~0.2 ml/平皿
三、结果判定
1、阳性对照至少有一个平板出现支原体菌落,而阴性对照中无支原体生长,则检验有效。
2、接种样品的任何一个琼脂平板上出现支原体菌落,液体培养基pH值发生变化时,判疫苗或血清不合格。
(液体培养物:如有支原体污染,液体培养基因支原体生长变为淡黄色并浑浊。注意:被检物接种到液体培养基后,由于疫苗中保护剂的作用,经培养后,有时颜色发生变化,变淡发黄,但不浑浊,培养物透明,属于正常变化。在不能判断的情况下,进行移植培养,观察培养物是否出现恒定pH变化。
固体培养物:支原体在固体培养基上生长稍迟缓,接种3~7天后出现菌落,菌落非常小,直径在50~100um之间,用40倍左右显微镜观察,支原体菌落深入到琼脂面下生长发育,菌落中心侵进培养基深层,密集生长繁殖,在琼脂培养基的表面其边缘呈圆形,因此,菌落整体形态如油煎蛋状。注意:生物制品中污染的支原体,菌落并不像书上描述的典型菌落,而是呈圆形隆起,表面呈颗粒状,中心聚集如杨梅状,无外晕。只有经过多次传代后才能形成典型“油煎蛋”状菌落。)
四、注意事项
1、支原体检验要求的条件非常苛刻,所用器物必须清洁灭菌。
2、检验操作时必须戴口罩;工作帽;穿洁净工作服,操作中尽量不说话,不来回走动。
3、操作时绝对禁止用口吹吸管;口腔是口腔支原体感染的主要途径。
4、检验结束后,开封的检品要经灭菌后再处理。
◆外源病毒检验
一、样品处理
1、种毒:
鸡新城疫低毒力(LaSota) 种毒:种毒病毒含量/外源病毒检验时要求的含量(一般为10羽份/0.1ml)=该种毒的稀释倍数—→与等量抗血清中和
鸡痘种毒:
球虫种毒:
2、成品:
鸡新城疫低毒力活疫苗:取样3瓶(500羽/瓶)—→每瓶加M199溶液5 ml(100羽/ml即10羽/0.1ml)
—→各瓶取样2ml混合(共6ml)—→取混合样2.5ml与2.5ml抗血清等量中和(37℃中和1h其间摇数次)
鸡痘活疫苗:取样3瓶(500羽/瓶)—→每瓶加???5 ml(100羽/ml即10羽/0.1ml)—→混合样
品冷冻离心(4℃,1200g,15min)—→取上清液经0.8um、0.45um、0.22um、0.1um滤器各过滤1次
鸡球虫病三价活疫苗:取样3瓶(500羽/瓶)—→混合样品冷冻离心(4℃,12000g,15min)—→取
上清液经0.8um、0.45um、0.22um、0.1um滤器各过滤1次—→用M199溶液稀释至10羽/ml
二、接种、观察及判定
1、鸡胚检查法:
10日龄SPF鸡胚20枚—→10枚尿囊腔(AS),10枚尿囊膜(CAM)接种0.2 ml/胚—→37℃继续孵育,观察7日—→弃去24h内死胚(但每组须活8/10以上实验成立)—→结果:胎儿应发育正常,绒毛尿囊莫无病变;鸡胚液血凝试验应为阴性
2、细胞检查法:
6瓶长成良好单层的细胞瓶(100 ml容量瓶)—→2瓶接种已处理的样品0.2ml/瓶37℃吸附1h换上维持液(含2~5%犊牛血清的乳汉液);2瓶接LaSota病毒(104 EID50/瓶);2瓶不接种作阴性对照—→37℃继续培养5~7天,每天观察应无任何CPE—→培养结束后,弃去培养液,用PBS( )轻洗细胞面3次—→每瓶细胞加0.1%(V/V)鸡红细胞液0.5 ml覆盖细胞面—→4℃放置1h—→再用PBS轻洗细胞面2次—→普通显微镜下观察:阳性对照应有典型红细胞吸附现象;阴性对照应无血球吸附现象;样品细胞不应出现红细胞吸附现象。
◆鸡胚成纤维细胞(CEF)单层的制备
10日龄SPF鸡胚—→无菌取出鸡胚于烧杯中—→去除头、四肢和内脏—→汉氏液洗涤胚体—→剪碎成米粒大小—→汉氏液洗涤2~3次—→加0.25%胰酶溶液(约4.0ml/胚)—→置38℃水浴消化20~30min—→吸出胰酶溶液,用汉氏液洗涤2~3次—→弃去汉氏液,加适量营养液(含5%犊牛血清的乳汉液,适量抗生素,一般500IU/ml)吹打成细胞悬液—→用多层(4~8)纱布(或80~100目尼龙网)滤过—→制成100~150万个/ml的活细胞悬液(一般估算不计数)—→分装到100ml细胞瓶中(10~15 ml/瓶),37℃CO2培养箱(瓶口要稍微拧松,便于CO2进入细胞瓶)或恒温培养箱—→24h后形成单层细胞备用。
◆禽白血病病毒(RAV)检验
一、样品处理
1、种毒:
2、成品:
鸡新城疫低毒力活疫苗:取样1瓶(500羽/瓶)—→加不含血清的M199溶液2ml(250羽/ml即200羽/0.8ml)—→取0.8ml(含200羽份)与0.8mlNDV抗血清等量中和(37℃中和1h其间摇数次)—→全部接种到细胞瓶中
问题:要不要离心取上清液后再中和
鸡痘活疫苗:取样2瓶(500羽/瓶)—→加不含血清的M199溶液2ml/瓶(250羽/ml即500羽/2ml)—→混合样品冷冻离心(4℃,12000g,15min)—→取上清液经0.8um、0.45um、0.22um和0.1um滤器各过滤1次—→取滤液2ml(相当于500羽份)用于接种CEF
冷冻离心(4℃,12000g,15min)???
球虫苗:
3、细胞液:
二、接种与培养
CPE接种后,37℃吸附1h—→弃去接种液,加生长液(含5~10%犊牛血清的乳汉液)—→次日换成维持液(含2~5%犊牛血清的乳汉液)
注:同时设立正常细胞作阴性对照;禽白血病病毒(RAV)作阳性对照。
阳性对照:对照分两组,每组2瓶CEF,弃去生长液(保留1 ml原培养液)—→两组对照分别加入RAV1和RAV2各0.5 ml—→37℃吸附1h—→直接加入培养液(???)(不用弃去原来液)—→同样品连传3代(传代时病毒对照要在最后进行)
试剂盒生产厂家,操作方法等
三、细胞传代与处理
待细胞培养5~7日后—→弃去细胞瓶中的液体,加适量胰酶EDTA消化液—→室温静置2~5min至
细胞松散—→弃细胞消化液,静置2min—→加入适量营养液( )使细胞悬浮—→将1/2细胞收集到试管中标记P1放-70℃—→另外1/2细胞分散到两个25ml容量细胞瓶中,加入培养液使之混匀—→同样培养至5~7日继续传代处理为P2和P3代,所有对照细胞瓶同样传代,阳性病毒对照应最后处理
四:结果判定(ELISA试验)
1、样品处理
将收获的细胞培养物冻融3次—→3000rpm离心5min—→取上清液作被检样品
2、试验操作
将试剂盒中所有成份回复到室温—→加样:每孔100ul被检样品,设阳性、阴性对照孔,每个样品加两孔,—→密闭(用封口膜封板)放置37℃作用1h—→洗涤:弃去样品,每孔加300ul洗涤液,放置1min,弃去洗涤液(含0.1%吐温-20的PBS即PBS-T)洗4~5次300ul/次,每次洗板要尽量弃尽洗涤液—→加酶标抗体:每孔100ul,密闭(用封口膜封板)放置37℃作用1h—→洗涤:同上—→加显色液:将试剂盒中的A液和B液等体积混合均匀后,每孔加100ul室温避光10min—→加终止液:每孔加100ul—→读数:用酶标仪在650nm波长下读取OD值(置酶联读数仪测定各孔OD650nm值)—→结果判断:当阴性对照OD650nm值小于0.2,阳性对照OD650nm值大于0.4时试验结果成立;被检样品OD650nm值大于0.3判为阳性,0.2≤OD650nm值≤0.3判为可疑,OD650nm值小于0.2判为阴性。对可疑样品应进行重检,重检仍为可疑判为阴性。
注意事项:1 试验过程中使用的吸头、容器等均要保证清洁;2 加终止液后尽快读数;3 每次的弃液应经无害化处理(???)。
◆禽网状内皮组织增生症病毒(REV)检验
一、样品处理
样品处理同禽白血病病毒检验法。
二、接种与培养
处理好的样品接种1个25cm2左右的CEF单层—→置37℃吸附1h—→弃去接种液,用含3%牛血清的M-199培养液洗CEF单层2次(2ml/次)—→每瓶细胞加7~8ml含3%牛血清的M-199培养液,37℃培养7日。
同时设立正常细胞作阴性对照;将鸡禽网状内皮组织增生症病毒(REV)至10TCID50/ml,取1.0ml接种至CEF作为阳性对照。
稀释10TCID50/ml
三、细胞培养的传代及处理
1、含鸡痘病毒(FPV)的制品
a、第一代培养物的处理
第一代检品培养物、病毒对照培养物及细胞对照培养物的细胞培养液,均无菌弃去2~3ml,使细胞培养瓶中剩余5ml然后将细胞瓶中的CEF单层及细胞培养液冻融3次,充分吹吸使细胞脱壁。细胞悬液于4℃,5000g离心10min,取上清液经0.1um滤膜过滤1次,滤液用于下一步检验。 b、接种CEF细胞
取上述处理好的样品滤液0.4ml用于接种已长成良好CEF单层的48孔细胞培养板,每个样品接种4孔,每孔0.1ml。剩余滤液全部接种于1个已长成良好CEF单层的细胞培养瓶中,37℃吸附1h。然后48孔板中每孔补加0.4ml含2%牛血清的M-199细胞培养液,细胞瓶弃去吸附液,每瓶加7~8ml含2%牛血清的M-199细胞培养液。细胞培养板接种后置5%CO2、37℃继续培养5天,然后进行荧光染色。细胞培养瓶接种后置37℃继续培养7天。
c、细胞传代
当接种的细胞培养板经荧光染色,判定为REV检测阳性时,细胞培养瓶培养物不必继续传代,否则按(2、其他制品及细胞液)方法传代
2、其他制品及细胞液
细胞培养7日后,按常规方法消化、收获细胞,将其中1/10的细胞用2ml含3%牛血清的M-199细胞培养液悬浮,接种4孔48孔板,每孔接种0.5ml。剩余细胞作好标记置-15℃保存备用。接种细胞的48孔板置5%CO2、37℃继续培养5日,然后进行荧光染色。
四、荧光染色
1、固定 弃去48孔板的细胞培养液,每孔约加0.5mlPBS(pH7.2下同)轻洗细胞表面1次,尽量
弃尽PBS,然后每孔加入0.3ml冷甲醇,置室温固定10~15min,弃去甲醇,自然晾干
(2~5min)。
2、加鸡抗REV单特异性抗体 自然晾干后,用PBS(pH7.2)洗细胞面1次,然后每孔加入0.1ml
用PBS(pH7.2~7.4)进行适当稀释的鸡REV特异性抗体,置37℃作用1h。
3、洗涤 弃去鸡抗REV特异性抗体,先用含0.05%吐温-20的PBS(pH7.2)洗3次,每次每孔加
入洗液0.5ml,轻微振荡洗涤1min。然后用PBS(pH7.2)以同样的方法洗2次。
4、荧光二抗染色 尽量弃尽洗液,每孔加入0.1ml用PBS(pH7.2)进行适当稀释的FITC标记的
兔抗鸡IgG,置37℃作用1h。
5、洗涤 同3。
五、观察
在荧光倒置显微镜下用蓝色激发光(波长490nm)观察。染色后立即观察效果最好,在湿盒中
4℃避光保存1周内观察。
被感染的CEF细胞(典型的成梭状,但多数呈不规则型)呈绿色荧光,有完整的细胞形态,周围未被感染的细胞不着色,视野发暗。放大到200~400时,可见被感染细胞胞浆着色,细胞核不着色,胞核的位置相对较暗。
六、结果判定
1、当阳性对照接种的4个孔中全部出现特异性绿色荧光,阴性对照接种孔均未出现特异性绿色荧光时,检验结果成立;否则检验结果不成立,需要重新检验。
2、被检样品接种的4个孔中,只要有1孔出现特异性绿色荧光,即判定该样品中REV阳性,样品
外源病毒检验结果判为不符合规定。