试剂盒质粒提取步骤
1 用1.5 ml离心管收集1-5 ml菌液。12,000 rpm离心1min，弃上清。
● 应根据所培养菌体的浓度与质粒的拷贝数，确定收集的菌液量。菌量过大可能导致溶菌不充分，纯化时会影响质粒纯度。菌体的体积与质粒拷贝数参见注意事项。
2 加入250 μl溶液Ⅰ/RNase A混合液，漩涡剧烈振荡直至菌体完全重新悬浮。室温静置1- 2min。
● 初次使用本试剂盒时，请将RNase A全部加入到溶液Ⅰ中，均匀混合后于 4℃保存。可保存6 个月。
● 不要残留细小菌块。菌体悬浮充分与否将决定质粒DNA 得率的高低。
● 室温静置1-2 min 是为使溶液中的RNA 被充分降解。
3 加入250 μl溶液Ⅱ，轻柔地反复颠倒混匀5-6次。室温放置1-2 min，使菌体充分裂解，直至形成澄清的裂解溶液。
● 若溶液Ⅱ出现沉淀，请于37℃保温溶解。待恢复至室温后使用。沉淀的出现不会影响质粒DNA 的纯化结果。
● 不可剧烈混和，否则会使染色体DNA 断裂。
● 此步骤不宜超过5 min。
4 加入350 μl溶液Ⅲ，立即轻柔地反复颠倒混匀5-6次。此时会出现白色絮状沉淀。
5 12,000 rpm 室温离心10 min，收集上清。
6 将上清置于DNA纯化柱中，静置1-2 min。
● 如果收集的上清液过多，超过DNA 纯化柱容积（800 μl），可将上清分次加入DNA 纯化柱中。
7 12,000 rpm 离心1 min，弃滤液。
● 此时质粒DNA 被吸附于DNA 纯化柱的硅胶膜上。
8 加入500 μl 溶液PB，12,000 rpm 离心1 min，弃滤液。
● 此步骤的作用是将硅胶膜上吸附的蛋白、盐等杂质洗脱，以获得高质量质粒DNA。
9 加入500 μl溶液W，12,000 rpm 离心1 min，弃滤液。
● 溶液W 初次使用前用无水乙醇按1: 1.5 稀释，即含60%乙醇。 10 加入500 μl溶液W，12,000 rpm 离心1 min，弃滤液。 11 12,000 rpm 离心3min，以彻底去除纯化柱中残留的液体。
12 将DNA纯化柱置于新的离心管中。向纯化柱中央处，悬空滴加50-100 μl 溶液Eluent，室温放置2 min。
● 12,000 rpm离心1 min， 管底即为高纯度质粒DNA。质粒DNA 于-20℃保存
● 溶液 Eluent 可用无菌双蒸水代替，但其pH 需为8.0-8.5。溶液Eluent 的加入体积视质粒拷贝数多少、用户对质粒浓度要求而定。